失血性休克实验设计
【实验目的】
1.复制失血性休克的动物模型。
2.观察失血性休克时和抢救休克时动物的呼吸,尿量,血压的变化;分析休克发生过程中的代谢以及微循环的变化。
3.了解失血性休克的治疗。
【实验原理】
休克是指机体在严重失血失液、感染、创伤等强烈致病因素作用下,有效循环血量急剧减少,组织血液灌流不足,引起组织细胞缺血缺氧,各器官功能、代谢障碍及结构损伤的病理过程。有效循环血量减少是大多数休克的共同发病环节;而微循环障碍是大多数休克发生的共同基础。根据休克发生过程中微循环的改变,将休克分为三期:1.微循环缺血期(代偿期);2.微循环淤血期(失代偿期);
3.微循环衰竭期(DIC期)。但依据失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗,首先是补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,纠正酸中毒,改善微循环状态。
【实验材料】
1.实验动物
成年家兔
2.器材与药品
(1)BL-420E+生物信号描计系统,婴儿秤;
(2)动物手术器械、动脉导管、静脉导管、气管插管、三通管、导尿管等
(3)实验药品:25%乌拉坦溶液、肝素、生理盐水、去甲肾上腺素
【观察指标】
1.呼吸
2.尿量
3.动脉压
4.中心静脉压
【实验步骤】
1.麻醉和固定:家兔称重后,25%乌拉坦按4ml/kg体重耳缘静脉注射麻醉,动物仰卧位固定,剪去家兔手术部位的被毛。
2.颈部手术:从甲状软骨向下作5cm~7cm长的颈正中切口,分离气管、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉。
3.插管:①气管插管,剑突连接张力换能器以描记呼吸曲线;②插导尿管
记录
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尿量;③耳缘静脉注射肝素1ml/kg;④左侧颈总动脉插入与换能器相连的颈动脉
导管;⑤从右侧颈外静脉插入与换能器相连的静脉导管。
4.观察:记录休克前家兔的呼吸,尿量,动脉压以及中心静脉压。
5.放血:从动脉插管处快速放血至平均动脉血压40mmHg时停止。
6.再观察:记录放血后20min家兔呼吸,动脉压以及中心静脉压的变化并于放血后立即记录家兔10min的尿量。
7.抢救:将放出的血液经静脉插管快速回输,并静脉推注去甲肾上腺素,观察此时各项指标的变化
【注意事项】
1.麻醉深浅要适度,麻醉过浅,动物疼痛,可致神经源性休克;过深则抑制呼吸。
2.动、静脉导管,事先用肝素充盈,排除空气。导管插入后,再推入少量的肝素抗凝,防止导管前端堵塞;静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。
3.不能将血液直接倒入输液瓶内,而要顺着瓶壁流下来,以免损伤红细胞。
4.输液时应注意三通管的使用,输液装置只能单向与静脉导管相通,不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时,需关闭输液通道,使换能器与静脉导管单向相通。
【实验结果预测】
少量失血后,呼吸急促,动脉压因代偿不变或升高;
大量快速失血后,家兔呼吸减微弱,血压明显下降,尿量明显减少,出现失血性休克症状。