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家兔失血性休克实验设计方案

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家兔失血性休克实验设计方案失血性休克实验设计 【实验目的】 1.复制失血性休克的动物模型。 2.观察失血性休克时和抢救休克时动物的呼吸,尿量,血压的变化;分析休克发生过程中的代谢以及微循环的变化。 3.了解失血性休克的治疗。 【实验原理】 休克是指机体在严重失血失液、感染、创伤等强烈致病因素作用下,有效循环血量急剧减少,组织血液灌流不足,引起组织细胞缺血缺氧,各器官功能、代谢障碍及结构损伤的病理过程。有效循环血量减少是大多数休克的共同发病环节;而微循环障碍是大多数休克发生的共同基础。根据休克发生过程中微循环的改变,将休克分为三...

家兔失血性休克实验设计方案
失血性休克实验设计 【实验目的】 1.复制失血性休克的动物模型。 2.观察失血性休克时和抢救休克时动物的呼吸,尿量,血压的变化;分析休克发生过程中的代谢以及微循环的变化。 3.了解失血性休克的治疗。 【实验原理】 休克是指机体在严重失血失液、感染、创伤等强烈致病因素作用下,有效循环血量急剧减少,组织血液灌流不足,引起组织细胞缺血缺氧,各器官功能、代谢障碍及结构损伤的病理过程。有效循环血量减少是大多数休克的共同发病环节;而微循环障碍是大多数休克发生的共同基础。根据休克发生过程中微循环的改变,将休克分为三期:1.微循环缺血期(代偿期);2.微循环淤血期(失代偿期); 3.微循环衰竭期(DIC期)。但依据失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。 对失血性休克的治疗,首先是补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,纠正酸中毒,改善微循环状态。 【实验材料】 1.实验动物 成年家兔 2.器材与药品 (1)BL-420E+生物信号描计系统,婴儿秤; (2)动物手术器械、动脉导管、静脉导管、气管插管、三通管、导尿管等 (3)实验药品:25%乌拉坦溶液、肝素、生理盐水、去甲肾上腺素 【观察指标】 1.呼吸 2.尿量 3.动脉压 4.中心静脉压 【实验步骤】 1.麻醉和固定:家兔称重后,25%乌拉坦按4ml/kg体重耳缘静脉注射麻醉,动物仰卧位固定,剪去家兔手术部位的被毛。 2.颈部手术:从甲状软骨向下作5cm~7cm长的颈正中切口,分离气管、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉。 3.插管:①气管插管,剑突连接张力换能器以描记呼吸曲线;②插导尿管 记录 混凝土 养护记录下载土方回填监理旁站记录免费下载集备记录下载集备记录下载集备记录下载 尿量;③耳缘静脉注射肝素1ml/kg;④左侧颈总动脉插入与换能器相连的颈动脉 导管;⑤从右侧颈外静脉插入与换能器相连的静脉导管。 4.观察:记录休克前家兔的呼吸,尿量,动脉压以及中心静脉压。 5.放血:从动脉插管处快速放血至平均动脉血压40mmHg时停止。 6.再观察:记录放血后20min家兔呼吸,动脉压以及中心静脉压的变化并于放血后立即记录家兔10min的尿量。 7.抢救:将放出的血液经静脉插管快速回输,并静脉推注去甲肾上腺素,观察此时各项指标的变化 【注意事项】 1.麻醉深浅要适度,麻醉过浅,动物疼痛,可致神经源性休克;过深则抑制呼吸。 2.动、静脉导管,事先用肝素充盈,排除空气。导管插入后,再推入少量的肝素抗凝,防止导管前端堵塞;静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。 3.不能将血液直接倒入输液瓶内,而要顺着瓶壁流下来,以免损伤红细胞。 4.输液时应注意三通管的使用,输液装置只能单向与静脉导管相通,不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时,需关闭输液通道,使换能器与静脉导管单向相通。 【实验结果预测】 少量失血后,呼吸急促,动脉压因代偿不变或升高; 大量快速失血后,家兔呼吸减微弱,血压明显下降,尿量明显减少,出现失血性休克症状。
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分类:医药卫生
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