关于实验蛋白质
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曲线的制作第一页,共十三页,2022年,8月28日一、实验目的学习考马斯亮蓝(CoomassieBrilliantBlue)法测定蛋白质浓度的原理和方法第二页,共十三页,2022年,8月28日二、实验原理一般用分光光度法测物质的含量,先要制作标准曲线,然后根据标准曲线查出所测物质的含量。考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度,是利用蛋白质―染料结合的原理,定量的测定微量蛋白浓度的快速、灵敏的方法。第三页,共十三页,2022年,8月28日考马斯亮蓝G-250存在着两种不同的颜色形式,红色和蓝色。它和蛋白质通过范德华力结合,在一定蛋白质浓度范围内,蛋白质和染料结合符合比尔定律(Beer’slaw)。此染料与蛋白质的碱性氨基酸(特别是精氨酸)和芳香族氨基酸残结合,通过测定595nm吸光度可测定蛋白质的含量。另外,反应体系中呈现的颜色变化主要是G-250分子间疏水相互作用形成的聚集体聚集程度不同引起的。单体形式
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现为蓝色,单体和聚集体共存时表现为绿色,全为聚集体形式呈现为棕红色。影响因素主要为溶液体系中磷酸、乙醇、NaCl的含量。第四页,共十三页,2022年,8月28日第五页,共十三页,2022年,8月28日蛋白质和染料结合是一个很快的过程,约2min即可反应完全,呈现最大光吸收,并可稳定1h,之后,蛋白质―染料复合物发生聚合并沉淀出来。第六页,共十三页,2022年,8月28日三、实验仪器和试剂(一)试剂1.考马斯亮蓝试剂:考马斯亮蓝G-250100mg溶于50mL95%乙醇,加入100mL85%H3PO4,用蒸馏水稀释至1000mL,滤纸过滤。最终试剂中含0.01%(W/V)考马斯亮蓝G—250,4.7%(W/V)乙醇,8.5%(W/V)H3PO4。2.标准蛋白质溶液:纯的牛血清血蛋白(BSA),预先经微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量,根据其纯度同0.15mol/LNaCl配制成1mg/mL蛋白溶液。第七页,共十三页,2022年,8月28日(二)器材721型分光光度计、移液管(1mL,5mL)、试管及试管架第八页,共十三页,2022年,8月28日四、实验步骤试管编号0123451mg/mL标准蛋白(mL)00.20.40.60.810.15mol/LNaCl(mL)10.80.60.40.20考马斯亮蓝试剂(mL)555555充分摇匀,20min内以0号管为空白对照,在595nm测定A595nm-第九页,共十三页,2022年,8月28日以A595nm为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标(六个点为200µg、400µg、600µg、800µg、1000µg),在坐标轴上绘制标准曲线。1.利用标准曲线查出回归方程。2.用Excel作图,测出回归线性方程。即A595nm=a×X。相关系数一般大于0.9。3.未知样品蛋白质浓度的测定:第十页,共十三页,2022年,8月28日测定方法同上,取合适体积的未知样品(奶粉,1g奶粉溶于30mL0.15mol/LNaCl,3000rpm离心5分钟,取上清待用),使其测定值在标准曲线的直线范围内(0~1000µg),根据所测定的A595nm,利用标准曲线或回归方程求出相当于标准蛋白质的量(µg),从而计算出未知样品的蛋白质浓度(mg/mL)。一般被测样品的A595nm值在0.1—0.5之间,所以上述样品如果A595nm值太大,可以减少取样量,如果仍然很大,可以定量稀释后再进行测定。第十一页,共十三页,2022年,8月28日五、注意事项:(一)蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合的反应十分迅速,在2min左右反应达到平衡;其结合物在室温下1h内基本稳定。如果测定
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很严格,可以在试剂加入后的5-20min内测定光吸收,因为在这段时间内颜色是最稳定的。(二)测定中,蛋白-染料复合物会有少部分吸附于比色杯壁上,实验证明此复合物的吸附量是可以忽略的。测定完后可用乙醇将蓝色的比色杯洗干净。1.Bradford法由于染色方法简单迅速,干扰物质少,灵敏度高,现已广泛应用于蛋白质含量的测定。2.有些阳离子,如K+、Na+、Mg2+、(NH4)2SO4、乙醇等物质不干扰测定,但大量的去污剂如TritonX-100、SDS等严重干扰测定。3.测定时仅使用一套比色杯(2个),并从低浓度到高浓度依次测定。中间不要用蒸馏水润洗比色杯,仅用待测液润洗2~3次即可。另外,还要注意,玻璃仪器要洗涤干净并保持干燥,避免温度变化;取量要准确;分光光度计十分灵敏,测定时要认真仔细。第十二页,共十三页,2022年,8月28日*感谢大家观看第十三页,共十三页,2022年,8月28日