GBT 18936-2003 高致病性禽流感诊断技术

ICS 11.220 B 41 中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准 GB/T 18936-2003 高致病性禽流感诊断技术 Diagnostic techniques for highly pathogenic avian influenza 2003一01一10发布 2003一05一01实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量 监督检验检 疫总 局 发 布 GB/T 18936-2003 目9 舀 高致病性禽流感(highly pathogenic avian influenza，简称HPAI)是由正猫病毒科流感病毒属中的 A型流感病毒引起的，被世界动物卫生组织[World Organization for Animal Health(英),Office Inter- national des Epizooties(法),OIE〕列为A类疾病，我国将其列为一类动物疫病。 本标准是参考OIE《诊断试验和疫苗标准手册》(200。年版)，并结合我国现有动物卫生法规及农业 部对禽流感的相关政策和措施制定的。 本标准的附录B、附录C、附录D、附录E、附录F为规范性附录，附录A为资料性附录。 本标准由中华人民共和国农业部提出。 本标准由全国动物检疫标准化技术委员会归口。 本标准起草单位:中国农业科学院哈尔滨兽医研究所。 本标准起草人:唐秀英、李海燕、田国斌。 GB/T 18936-2003 高致病性禽流感诊断技术 范围 本标准规定了高致病性禽流感(HPAD病毒分离与鉴定技术、血凝(HA)和血梁抑制(HI)试验、琼 脂凝胶免疫扩散(AGID)试验、酶联免疫吸附试验(间接ELISA)的技术要求。 本标准所规定的高致病性禽流感病毒分离与鉴定技术适用于各种禽类高致病性禽流感的病原分离 和鉴定;AGID和间接ELISA适用于A型禽流感病毒的型特异性检验:HA-HI试验适用于禽流感病毒 的血凝素亚型鉴定。 2 病毒分离和鉴定技术 2. 1 材料准备 2.1.1 病料的采集:死禽采集气管、脾、肺、肝、肾和脑等组织样品，进行分别处理或者同时处理;活禽病 料应包括气管或泄殖腔拭子，尤其是以采集气管拭子更好;小珍禽用拭子取样易造成损伤，可采集新鲜 粪便。 2.1.2 病料的保存:病料应放在含有抗菌素的pH值7. 0-7. 4的等渗磷酸盐缓冲液(PBS)内(无PBS 可用25%^ 50%的甘油盐水)。抗生素的选择视当地情况而定，组织和气管拭子悬液中应含有青霉素 (2 000 IU/mL),链霉素(2 mg/ml-)、庆大霉素(50 pg/ml-)和制霉菌素(1 000 IU/ ml)，但粪便和泄殖 腔拭子所有的抗生素浓度应提高5倍，加人抗生素后pH值应调至7.0-7.4。在室温放置1 h---2 h后 样品应尽快处理，没有条件的可在4'C存放几天，也可于低温条件下保存(-70`C贮存最好)。 2.1.3 病料的处理:将棉拭子充分捻动、拧干后弃去拭子;粪便、研碎的组织用含抗生素的pH值7.0 -7.4的等渗PBS溶液配成10写 -^20 % (g/mL)的悬液。样品液经1 000 r/min离心10 min，取上清液 作为接种材料。 22 病毒分离 2.2.1 样品接种:取处理好的样品，以0. 2 ml丫胚的量经尿囊腔途径接种9日龄-11日龄SPF鸡胚， 每个样品接种5个胚，于350C--370C孵化箱内孵育，18 h后每8h观察鸡胚死亡情况。 2.2.2 病毒收获:无菌收取18h以后的死胚及96 h仍存活鸡胚的鸡胚尿囊液，测血凝活性，阳性反应 说明可能有正薪病毒科的流感病毒;若无血凝活性或血凝价很低，则用尿囊液继续传2代，若仍阴性，则 认为病毒分离阴性 2. 3 病毒鉴定 2-3. 1 A型流感病毒的型特异性鉴定:样品接种鸡胚后，若鸡胚尿囊液具有血凝活性，可用具有血凝活 性鸡胚的绒毛尿囊膜(CAM)制成抗原，与A型禽流感病毒标准阳性血清进行AGID试验，检测样品中 是否含有A型流感病毒。 2,3.1.1抗原制备:从具有血凝活性的鸡胚中取出绒毛尿囊膜，用pH7. 2的PBS冲洗后，将CAM用 研磨器磨碎 磨碎的抗原反复冻融3次~4次，以1 000 r/min离心10 min后取上清，按终浓度为 0. 1%的量加人甲醛溶液。置37'C温箱灭活36 h做灭活检验后即可作为AGID试验用抗原，用禽流感 标准阳性血清进行型特异性鉴定，若被检样品与标准阳性血清之间出现清晰的沉淀线即可判定样品中 含有A型禽流感病毒。 2.3.1.2 AGID试验方法:按本标准第4章中的方法进行。 2. 3.2 血凝素亚型鉴定:当鸡胚尿囊液具有血凝活性时，首先应排除血凝活性是否由新城疫、减蛋综合 征等病毒引起，同时要注意是否有禽流感病毒与其他病毒混合感染。鸡胚尿囊液具有血凝活性或证明 GB/T 18936-2003 含有A型流感病毒存在后，采用HA-Hl试验方法(按本标第3章中的方法进行)，用禽流感病毒15种 血凝素(H1-H15)亚型分型血清对样品进行病毒亚型鉴定。血凝素亚型鉴定要求有全套的禽流感病 毒血凝素分型血清，一般在国家指定的实验室进行。 2.4 致病性测定 禽流感病毒致病性测定应在具有高度生物安全性的实验室中进行，有以下两种方法，任选其一。 2.4.1 静脉接种致病指数(IVPD测定法 2.4. 1. 1 试验鸡:6周龄SPF鸡，10只。 2.4.1.2 接种材料:感染鸡胚的尿囊液，血凝价在4 log:以上，未混有任何细菌和其他病毒。 2.4. 1.3 接种方法:将感染鸡胚尿囊液用生理盐水1，10稀释，以0. 1 mL/羽的剂量翅静脉接种。 2.4.1.4 每日观察每只鸡的发病及死亡情况，连续观察10d，计算IVPI值。计算方法参见附录A. 2.4. 1.5 判定标准:当IVPI值大于1.2时，判定此分离株为高致病性禽流感(HPAI)病毒株。 2.4.2 致死比例测定法 2.4.2. 1 试验鸡 4周龄,?8周龄SPF鸡，8只。 2.4.2.2 接种材料 感染鸡胚的尿囊液，血凝价在4 log:以上，未混有任何细菌和其他病毒。 2.4. 2. 3 接种方法 将感染鸡胚尿囊液用生理盐水1: 10稀释，以0. 2 ml了羽的剂量翅静脉接种。每日观察鸡的死亡 情况，连续观察10 d, 2. 4.2. 4 判定方法 2.4.2.4. 1接种10 d内，能导致6只~7只或8只鸡死亡，判定该毒株为高致病性禽流感病毒株。 2. 4.2. 4.2 分离物能使1只一5只鸡致死，但病毒不是H5或H7亚型，则应进行下列试验:将病毒接 种于细胞培养物上，观察其在胰蛋白酶缺乏时是否引起细胞病变或形成蚀斑。如果病毒不能在细胞上 生长，则分离物应被考虑为非高致病性禽流感病毒。 2.4.2.4.3 对低致病性的所有H5或H7毒株和其他病毒，在缺乏胰蛋白酶的细胞上能够生长时，则 应进行与血凝素有关的肚链的氨基酸序列 分析 定性数据统计分析pdf销售业绩分析模板建筑结构震害分析销售进度分析表京东商城竞争战略分析 ，如果分析结果同其他高致病性流感病毒相似，这种被检 验的分离物应被考虑为高致病性禽流感病毒。 3 血凝(HA)和血凝抑制(HD试验技术 3. 1 材料准备 3.1.1 96孔v型微量反应板，微量移液器(配有滴头)。 3. 1.2 阿氏(Alsevers)液、鸡红细胞悬液，配制方法见附录B, 3. 1. 3 pH7. 2,0. 01 mol/L PBS, 3. 1.4 高致病性禽流感病毒血凝素分型抗原和标准分型血清以及阴性血清。 3.2 操作方法 3.2. 1 血凝(HA)试验(微量法) 3.2. 1. 1 在微量反应板的1孔~12孔均加入0. 025 mL PBS，换滴头。 3.2. 1.2 吸取。.025 mL病毒悬液(如感染性鸡胚尿囊液)加入第1孔，混匀。 3.2. 1. 3 从第1孔吸取。.025 mL病毒液加人第2孔，混匀后吸取。.025 mL加人第3孔，如此进行对 倍稀释至第 11孔，从第11孔吸取0. 025 ml弃之，换滴头。 3.2. 1.4 每孔再加人0. 025 ml. PBS, 3.2.1.5 每孔均加人0. 025 ml体积分数为1%鸡红细胞悬液(将鸡红细胞悬液充分摇匀后加人)见附 录 B, GB/T 18936-2003 3.2.1. 6 振荡混匀，在室温(20"C-25`C)下静置40 min后观察结果(如果环境温度太高，可置4℃环 境下)。对照孔红细胞将成明显的钮扣状沉到孔底。 3.2.1.7 结果判定:将板倾斜，观察红细胞有无呈泪滴状流淌。完全血凝(不流淌)的抗原或病毒最高 稀释倍数代 表 关于同志近三年现实表现材料材料类招标技术评分表图表与交易pdf视力表打印pdf用图表说话 pdf 一个血凝单位(HAU), 3.2.2 血凝抑制(HD试验(微量法) 3.2.2. 1根据3.2.1试验结果配制4HAU的病毒抗原。以完全血凝的病毒最高稀释倍数作为终点， 终点稀释倍数除以4即为含4HAU的抗原的稀释倍数。例如，如果血凝的终点滴度为1，256，则 4HAU抗原的稀释倍数应是1，64(256除以4), 3.2.2.2 在微量反应板的1孔~11孔加人0. 025 mL PBS，第12孔加人0. 05 mL PBS, 3.2.2.3 吸取。.025 ml血清加人第1孔内，充分混匀后吸0. 025 mL于第2孔，依次对倍稀释至第 10孔，从第10孔吸取0. 025 mL弃去。 3.2.2.4 1孔~11孔均加人含4HAU混匀的病毒抗原液0. 025 mL,室温(约20V)静置至少30 min, 3.2.2.5 每孔加人。.025 mL体积分数为1%的鸡红细胞悬液混匀，轻轻混匀，静置约40 min(室温约 20`C，若环境温度太高可置4℃条件下进行)，对照红细胞将呈显钮扣状沉于孔底。 3. 3 结果判定 以完全抑制4个HAU抗原的血清最高稀释倍数作为HI滴度。 只有阴性对照孔血清滴度不大于2 1092 ,阳性对照孔血清误差不超过1个滴度，试验结果才有效。 HI价小于或等于3 1092判定HI试验阴性;HI价等于4 log:为可疑，需重复试验;HI价大于或等于 5 log:为阳性。 4 琼脂凝胶免疫扩散(AGID)试验 4.1 材料准备 4.1.1硫柳汞溶液、pH7. 2,0. 01 mol/L PBS溶液，配制方法见附录C, 4.1.2 琼脂板:制备方法见附录D, 4.1.3 禽流感琼脂凝胶免疫扩散抗原、标准阴性和阳性血清。 4.2 操作方法 4.2. 1 打孔:在制备的琼脂板上按7孔一组的梅花形打孔(中间1孔，周围6孔)，孔径约5 mm.孔距 2 mm-5 mm，将孔中的琼脂用8号针头斜面向上从右侧边缘插人，轻轻向左侧方向将琼脂挑出，勿伤 边缘或使琼脂层脱离皿底。 4.2.2 封底:用酒精灯轻烤平皿底部至琼脂刚刚要溶化为止，封闭孔的底部，以防侧漏。 4.2.3 加样:用微量移液器或带有6^-7号针头的0. 25 mL注射器，吸取抗原悬液滴人中间孔(图1的 ⑦号)，标准阳性血清分别加人外周的①和④孔中，被检血清按编号顺序分别加人另外4个外周孔(图1 的②，③，⑤，⑥号孔)。每孔均以加满不滋出为度，每加一个样品应换一个滴头。 ) / \) ⑤--了③ ④ 图 1 AGP试验结果 4.2.4 作用:加样完毕后，静止5 min-10 min，然后将平皿轻轻倒置放人湿盒内，37'C温箱中作用，分 别在24 h,48 h和72 h观察并记录结果。 GB/T 18936-2003 4. 3 结果判定 4. 3. 1 判定方法 将琼脂板置日光灯或侧强光下观察，若标准阳性血清(图1的①和④号孔)与抗原孔之间出现一条 清晰的白色沉淀线，则试验成立。 4.3.2 判定标准 4. 3.2. 1 若被检血清(如图1中的②号)孔与中心抗原孔之间出现清晰致密的沉淀线，且该线与抗原与 标准阳性血清之间沉淀线的末端相吻合，则被检血清判为阳性。 4.3.2.2 被检血清(如图1中的③号)与中心孔之间虽不出现沉淀线，但标准阳性血清(如图1中④)的 沉淀线一端向被检血清孔内侧弯曲，则此孔的被检样品判为弱阳性(凡弱阳性者应重复试验，仍为弱阳 性者，判为阳性)。 4. 3. 2. 3 若被检血清(如图1中的⑤号孔)孔与中心孔之间不出现沉淀线，且标准阳性血清沉淀线直向 被检血清孔，则被检血清判为阴性。 4.3.2.4 被检血清孔(图1中的⑥号孔)与中心抗原孔之间沉淀线粗而混浊或标准阳性血清与抗原孔 之间的沉淀线交叉并直伸，被检血清孔为非特异反应，应重做，若仍出现非特异反应则判为阴性。 5 间接酶联免疫吸附试验(间接ELISA) 5.1 材料准备 5.1.1 酶标板、加样品(带滴头)，酶标测定仪。 5. 1.2 使用溶液的配制:方法见附录Eo 5.1.3 间接ELISA抗原，间接ELISA酶标抗体。 5. 1. 4 抗原包被板制备:方法见附录F, 5.2 操作步骤 5.2. 1 样品准备:将被检血清用稀释液(见附录E. 5 )做1，400稀释。 5.2.2 加样:取出抗原包被板，倒掉孔内包被液，用洗液洗3次。除A1,B1,C1和D1孔不加样品，留 做空白调零，阴性血清和阳性血清做对照各占1孔外，其余孔加1 : 400稀释的被检血清，每孔100川， 将加样位置做好记录，将反应板盖好盖子后置37℃环境下作用30 min, 5.2. 3 洗涤:倒掉孔内液体，在吸水纸上空干，每孔加满洗液，静置1 min-2 min后倒掉，空干，再重复 洗2次。 5.2.4 加酶标抗体:除A1,Bl,C1和D1孔外，其他每孔加酶标抗体液100川，盖好盖子后置37℃环境 下作用30 min, 5.2.5 洗涤:洗涤方法同5.2.3. 5.2.6 加底物:加底物使用液(见附录E. 6 )，每孔90 SL,置室温避光显色2 min-3 min, 5.2.7 终止:加中止液(见附录E. 8 )，每孔90 pL，使其终止反应。 5.3 结果判定 用酶标仪测定每个孔在490 nm波长的光密度值(即OD值)，OD)O. 2者判为阳性，0. 18<0D< 0.2需重复测试1次，若仍在此范围则判为阳性，OD1.2，因此，本试验中的分离株为HPAIV o 259 GB/T 18936-2003 附 录 B (规范性附录) HA和HI试脸用溶液的配制 B. 1 阿氏(Alsevers)液配制 葡萄糖 柠檬酸钠 柠檬酸 氯化钠 加蒸馏水至 100 ml，散热溶解后调 2.05 g ·8g .055 g 0. 42 g pH值至6. 1,69 kPa 15 min高压灭菌，4℃保存备用。 B.2 1%鸡红细胞悬液制备 采集至少3只SPF公鸡或无禽流感和新城疫等抗体的健康公鸡的血液与等体积阿氏液混合，用 pH7. 2,0. 01 -o1/1. PBS液洗涤3次，每次均以1 000 r/min离心10 min,洗涤后用PBS配成体积分数 为1%红细胞悬液，4℃保存备用。 GB/T 18936-2003 附 录 C (规范性附录) AGP试验用溶液的配制 C. 1 ，%硫柳汞溶液的配制 硫柳汞 L09 加蒸馏水至 100 MI 溶解后，置100 ml,瓶中盖塞存放备用。 C. 2 pH 7. 2,0. 01 mol/L PBS的配制 a)配制25 X PB:称量2. 74 g磷酸氢二钠和。，79 g磷酸二氢钠加蒸馏水至100 ml。 b)配制1XPBS:量取40 ml. 25 X PB，加人8.5 g抓化钠，加蒸馏水至1 000 ml - 。)用氢氧化钠或盐酸调pH至7.2. d)灭菌或过滤。 0 PBS一经使用，于4'C保存不超过3周。 GB/T 18936-2003 附 录 D (规范性附录) 琼脂板的制备 称量琼脂糖1. 0 g，加人100 mL的pH 7. 2,0. 01 mol/L PBS液中在水浴中煮沸充分融化，加人8g 氯化钠，充分溶解后加人1%硫柳汞溶液1 m工_。冷至45`C-50`C时，将洁净干热灭菌直径为90 mm的 平皿置于平台上，每个平皿加人18 mI.--20 ml,，加盖待凝固后，把平皿倒置以防水分蒸发，放普通冰箱 中保存备用(时间不超过 2周)。 GB/T 18936-2003 E. 1 碳酸盐级冲液((0 碳酸钠 碳酸氢钠 附 录 E (规范性附录) 商致病性禽流感间接ELISA使用溶液的配制 05 mol/L,PH9. 6,CBS) 1. 59 g 2. 93 g 用双蒸水溶解至1 000 ml，于4℃保存，不超过 1个月。 E. 2 磷酸盐缓冲液(0. 01 mol/L, pH 7. 4, PBS) 氯化钠 磷酸二氢钠 磷酸氢二钠(Na, HPO,·12H20) 氯化钾 加蒸馏水至 8g 0. 2 g 2. 9 g 0. 2 g 1 000 mL E. 3 洗液(含0. 05% Tween-20的0. 01 mol/L,PHT 4的PBS，即PEST) Tween-20 加0.01 mot/I., pH7.4的PBS至 0. 5 mL 1 000 ml E. 4 封闭液(含0. 5%BSA的PBST) 牛血清白蛋白(BSA) 加洗液至 4℃存放，避光 0. 5 g 100 ml E. 5 稀释液(含0. 1 %BSA的PBST) 牛血清白蛋白(BSA) 加洗液至 4℃存放，避光。 0. 1 g 100 -L E. 6 间接ELISA底物缓冲液(确酸氮二钠一柠椒酸，pH5. 4) 0. 2 mol/I磷酸氢二钠(Nat HP0,·12H20) 26.7 mL 0. 1 mol/I柠檬酸 24.3 mL 双蒸水 49 mL 准确称量40 mg邻苯二胺(OPD)，溶解后置暗处保存，临用前加人30%过氧化氢150越。 用时现配，避光。 E. 7 三经甲基擞基甲烷一盐酸(Tris-HCI)缓冲液(0. 05 mol/L PH7: 6) 0. 1 mol/L Tris 0. 1 moll 盐酸 双蒸水 250 mL 192. 5 mL 57.5 ml GB/T 18936-2003 E. 8 间接ELISA终止液 ;ml.mI. ? ??浓硫酸 蒸馏水 264 CB/T 18936-2003 附 录 F (规范性附录) 高致病性禽流感间接ELISA抗原包被板制备 抗原包被板也称诊断板，将高致病性禽流感抗原用0. 05 mol/L, pH9. 6碳酸盐缓冲液(见附录第 E. 1章)稀释成3 fag/mL(全病毒抗原)或6 fag/-L(重组核蛋白抗原)，包被40孔聚苯乙烯微量板，每孔 100 faL，置4℃冰箱过夜，用洗液洗涤(见附录第E. 3章))3次，用封闭液(见附录第E. 4章)于37"C湿盒 内封闭60 min，用洗涤液洗涤3次，干燥后即为诊断板，置4℃冰箱备用。