质粒DNA的微量制备及电泳检测

专业： 制药工程 姓名： 马良 学号： 3150105838 日期： 2017.6.7 地点： 308 实验 报告 软件系统测试报告下载sgs报告如何下载关于路面塌陷情况报告535n,sgs报告怎么下载竣工报告下载 课程名称：  生物化学实验（甲）      指导老师：                成绩：__________________ 实验名称： 质粒DNA的微量制备及电泳检测 实验类型：              同组学生姓名：                         一、实验目的和要求（必填）                二、实验内容和原理（必填） 三、实验材料与试剂（必填）              四、实验器材与仪器（必填）            五、操作 方法 快递客服问题件处理详细方法山木方法pdf计算方法pdf华与华方法下载八字理论方法下载 和实验步骤（必填）          六、实验数据记录和处理        七、实验结果与 分析 定性数据统计分析pdf销售业绩分析模板建筑结构震害分析销售进度分析表京东商城竞争战略分析 （必填）              八、讨论、心得 一、实验目的 1、学习并掌握质粒DNA的提取原理和方法 2、了解琼脂糖凝胶电泳检测核酸的原理和操作 3、学习并掌握对电泳检测结果的初步分析 二、实验原理 1.　质粒是一种染色体（核质体）外的寄生性的自主复制子，存在于细菌等细胞中，为双链闭环的DNA分子，大小在1-200kb（千碱基）之间，具有自主复制和转录功能, 能 表 关于同志近三年现实表现材料材料类招标技术评分表图表与交易pdf视力表打印pdf用图表说话 pdf 达例如抗性、菌毒素等细胞非必需的遗传信息，但其复制和转录必须要利用依赖宿主细胞（细菌）基因组DNA编码的一些酶和蛋白质。质粒能够自发的或人为的在细胞间转移，因此是基因工程技术中将外源基因导入受体细胞的重要载体。 细菌DNA和质粒DNA形状上均为双链环形，但二者的分子量相差较大，细菌DNA的分子量在 D左右，而质粒DNA的分子量在 --- D左右。 提取纯化质粒的过程中，细菌DNA大多数断裂成线状分子，而质粒DNA则多数仍为双链环状，从而可以将二者分开。 2.　从细菌细胞中抽提质粒DNA分为三个步骤： 1　细菌培养使质粒大量扩增； 2　收集和裂解细胞,并去掉细菌碎片和核质体DNA ； 3　进一步除去蛋白、脂类、RNA等杂质，分离和纯化质粒DNA。 本实验采用碱裂解法来分离纯化质粒DNA： 3.　在EDTA存在下，经过SDS处理使细胞膜裂解，从而使菌体充分裂解，利用在碱性条件下（NaOH），使核质体DNA与质粒DNA的变性；加入乙酸钾，在中性条件下，核质体DNA与质粒DNA又存在复性的差异，质粒DNA很快得以复性，而细菌核质体DNA分子难以复性，核质体DNA会缠绕附着在细胞膜碎片上通过离心被沉淀下来，质粒DNA则留在上清液内；上清液中还含有可溶性蛋白质、核糖核蛋白和少量核质体DNA以及脂质类杂质等，可通过碱性酚-氯仿-异戊醇混合液的抽提去除；含有质粒DNA的上清液用无水乙醇或异戊醇沉淀，这是由于当加入无水乙醇时，其会夺去核酸周围的水分子，使其失水而易于聚合。一般用2倍体积的乙醇或1倍体积的异丙醇沉淀DNA和RNA。获得较纯的质粒DNA。 ４.　碱性SDS法的分离原理： 当溶液的pH值调节到大于12时，双链DNA中的氢键被破坏，于是染色体DNA的双链便分离成单链；而超螺旋状态的质粒DNA仅仅是部分氢键被破坏，并且只发生部分双链解离成单链的变化。当再将溶液的pH值调回中性时，单链DNA互相缠绕并且与蛋白质结合生成网络状大分子，而超螺旋地质粒发生复性反应后仍然是小分子，通过离心的方法将两者分开。 ５.　实验过程步骤原理图如下： 溶菌酶            SDS 细菌          破细胞壁          破细胞膜 （含质粒）              NaOH  （细菌DNA和质粒DNA均 通过变性成为线状分子） 冰醋酸  细菌DNA与变性蛋白和细胞碎片缠绕在一起（不能复性) 离心 质粒DNA经复性后变为共价闭合环状 沉淀：细菌DNA、细胞碎片等 酚：氯仿 上清：质粒DNA、RNA、可溶性蛋白等　 离心 下层：酚、氯仿 中层：变性蛋白 无水乙醇 上清（水层）：质粒DNA、RNA等 离心 上清：可溶性杂质等 RNase 沉淀：质粒DNA、RNA等            　质粒DNA ６.　DNA的琼脂糖凝胶电泳鉴定: 核酸是一种两性电解质（碱基、磷酸），在pH8.0下，核酸带负电荷，电泳时向正极移动，根据核酸分子所带电荷的多少，分子的大小及构型的差异，可用电泳的方法对核酸进行分离和鉴定。DNA分子在琼脂糖凝胶中有电荷效应和分子筛效应。DNA分子在碱性溶液中（pH8.3缓冲液）带负电荷，它在电场作用下向正极泳动。在一定的电场强度下，DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应，即具有不同的相对分子量的DNA片段泳动速度不同，并能区分出不同的区带。DNA片断在凝胶中当用低浓度的荧光嵌入染料溴化乙锭（EB）染色后，在紫外光下可见橙红色带，并可确定DNA片断在凝胶中的位置。 ７.　影响DNA泳动速率（迁移率）的因素有： ⑴ DNA分子质量的影响：双链DNA分子迁移的速率与DNA分子量对数成反比。分 子量越大，迁移率越小。 ⑵ DNA构型的影响：超螺旋DNA＞线状DNA＞开环DNA ⑶ 胶浓度的影响： 浓度越低，相同核酸分子迁移越快，一般常用的凝胶浓度 为1％～2％； ⑷ 电场强度的影响：电场强度愈大，带点颗粒的泳动越快。但凝胶的有效分 离范围随着电压增大而减小，所以电泳时一般采用低电压，（一般5V/cm） （电场强度） 。而对于大片段电泳，甚至用0.5～1.0V/cm电泳过夜。进行 高压电泳时，只能使用聚丙烯酰胺凝胶。 ⑸ EB：溴化乙锭（EB）插入双链DNA造成其负电荷减少、刚性和长度增加。 ⑹ 电泳缓冲液的影响:核酸电泳常采用TAE、TBE、TPE三种缓冲系统，但它们 各有利弊。TAE价格低廉，但缓冲能力低，必须进行两极缓冲液的循环。 TPE在进行DNA回收时，会使DNA污染磷酸盐，影响后续反应。所以多采用 TBE缓冲液。在缓冲液中加入EDTA，可以鳌合二价离子，抑制DNase，保护 DNA。缓冲液pH常偏碱性或中性，此时核酸分子带负电，向正极移动。 ⑺ 碱基组成与电泳温度的影响: 一般影响不大 ８.　质粒DNA不同构型在琼脂糖凝胶电泳中的迁移速度： 环形双链DNA分子有三种构型。 1) 第一种是共价闭合环状 DNA(coalently close circular DNA，ccc DNA)，它的两条链都保持完整的环状结构，通常呈超螺旋构型，迁移速度最快； 2) 第二种是开环 DNA(open circularDNA，oc DNA)，它的双链中的一条保持完整的环状结构，另一条单链上有一到几个切口两条核苷酸链中只有一条保持完整的环形结构，即OC构型，迁移速度最慢； 3) 第三种是线状DNA，这种质粒的双链断裂呈线状,通称L构型。 这三种构型的同一种质粒在琼脂糖凝胶中电泳时，出现不同的迁移速率，走得最快的是超螺旋构型，其次是线性构型，最慢的是开环构型。 质粒在琼脂糖凝胶中电泳结果出现：一条带是最好的（超螺旋构型），二或 三条带也是正常的。 三、实验材料与试剂及用途 1、实验材料 含重组质粒菌种 2、实验试剂 ⑴ LB液体培养基  ⑵ 氨苄青霉素：100mg/ml，⑶ 溶液Ⅰ， ⑷ 溶液Ⅱ， ⑸ 溶液Ⅲ ， ⑹ 酚：氯仿：异戊醇（25：24：1），⑺ 无水乙醇， ⑻ 70%乙醇，⑼ TE缓冲液（pH 8.0），⑽ RNaseA（1mg/ml）， ⑾ 0.5×TBE缓冲液（pH8.0），⑿  琼脂糖，⒀ 6×加样缓冲液 ， ⒁ 1mg/ml溴化乙锭（EB）， 3、溶剂作用： 1、溶液Ⅰ：葡萄糖：增加溶液的黏度，减少抽提过程中的机械剪切作用，防止破坏质粒DNA。EDTA：络合掉Mg等二价离子，防止DNA酶对质粒分子的降解作用。Tris·HCl：使溶菌液维持溶菌作用的最适pH范围。 2、溶液Ⅱ：SDS：解聚核蛋白并与蛋白质分子结合使之变性。NaOH：破坏氢键，使DNA分子变性。 3、溶液Ⅲ：中和溶液Ⅱ的碱性，使染色体DNA复性而发生缠绕，并使质粒DNA复性。高盐的3mol/L NaAc/KAc有利于变性的大分子核质体DNA以及K/Na离子会与SDS形成溶解度很低的盐并与蛋白质形成沉淀而除去。 4、酚：一种强烈的蛋白质变性剂，能非常有效地去除蛋白质，同时抑制了核酸酶的降解作用。 5、氯仿：有强烈的溶脂倾向，可以溶解细胞膜，同时溶解去除脂质类杂质，此外具有使蛋白质变性并分相的作用。 6、异戊醇：减少蛋白质变性操作过程中产生的气泡。 7、乙醇或异丙醇——可以沉淀核酸，当加入乙醇时，其会夺去核酸周围的水分子，使其失水而易于聚合。一般用2倍体积的乙醇或1倍体积的异丙醇沉淀DNA和RNA。 8、70％的乙醇——用于洗涤核酸沉淀，其目的是去除盐及挥发性较小的异丙醇。 9、RNaseA——用于消化质粒DNA溶液中的残余RNA。 四、实验器材与仪器 1、恒温培养箱 37℃；        2、恒温摇床 37℃； 3、高压灭菌锅；                  4、超净工作台； 5、台式离心机；              6、振荡器； 7、微量移液枪(10，20，200，1000ul)； 8、枪头（10，20，1000ul）及枪头盒； 9、离心管 1.5ml及离心管架； 10、制冰机； 11、冰箱；                          12、干式恒温器 37℃、50℃ ； 13、微波炉；            14、电泳仪及； 15、电泳槽；                        16、紫外检测仪。 五、操作方法和实验步骤 （一） 细菌培养质粒DNA大量扩增 挑单菌落（有Amp抗性）接种于5ml含Amp的LB液体培养基中，37℃震荡培养过夜。 （二） 收集细菌,碱裂解液提取质粒DNA，纯化质粒DNA 1、取1.2ml的过夜培养菌液加入1.5ml离心管中，8000r/min离心1min。 2、弃上清液，将管倒置于吸水纸上，使液体尽可能流尽。 3、将菌体沉淀加100ul溶液Ⅰ，振荡悬浮菌体，冰浴放置5min。 4、加200ul溶液Ⅱ，盖紧管盖，快速温和颠倒离心管3-4次，确保离心管内溶液混匀使之变清，冰浴7min。 5、加150ul溶液Ⅲ，盖紧管口，颠倒3-4次使之混匀，冰浴放置7min。 6、12000r/min离心10min，将上清液转至另一干净离心管，若有分层取下层。加入等体积的酚：氯仿：异戊醇（25：24：1），振荡3-4次混匀，12000r/min离心8min 。 7、上清液移入另一干净离心管中，加入2倍体积的无水乙醇，混匀后置于-20℃冰箱中20min。 8、12000r/min离心10min，弃上清液，将溶液管口倒置于吸水纸上，使液体尽可能流尽。 9、加入1ml 70﹪乙醇洗沉淀一次（动作要轻），弃70﹪乙醇溶液，将管口倒置于吸水纸上，使液体尽可能流尽，50℃开盖干燥3-5分钟。 10、将沉淀溶于50ul TE缓冲液（pH8.0，含20mg/L RNaseA）中，置37℃恒温器中保温30min后，取质粒DNA样液做琼脂糖凝胶电泳鉴定，其余纯化的质粒DNA样品置于-20℃保存备用。 （三）琼脂糖凝胶电泳 1、制胶（1.0％琼脂糖凝胶） 在胶模上架好梳子。称取1.2g琼脂糖，置于250ml锥形瓶中，加100ml 0.5×TBE电泳缓冲液，加热熔化至无颗粒状琼脂糖，待其冷却至50～60℃后，加入EB，使其终浓度为0.5mg/L，摇匀后立即倒入准备好的胶模中，待胶凝固后，放入电泳槽中，倒入适量0.5×TBE（刚好淹过胶面），拔去梳子备用。（注：EB为诱变剂、致癌物，接触凝胶必须戴手套操作） 2、加样 取10ul纯化的质粒DNA样品，与1ul 6×电泳加样缓冲液混匀，用微量移液枪小心加入样品槽中（注：勿划破或戳穿加样孔，勿带入气泡）。若DNA含量偏低，则可依上述比例增加上样量，但总体积不可超过样品槽容量。每加完一个样品要换枪头以防互相污染。注意上样时要小心操作，避免损坏凝胶或将样品槽底部凝胶刺穿。 3、电泳 加完样后，盖上电泳槽盖，立即接通电源，使电压调到100V，恒压电泳。当溴酚蓝条带移动到距凝胶前缘约2cm时，停止电泳（约需30～60min）。 4、观察和拍照 取出胶块置于紫外灯下观察，DNA存在处可显示出肉眼可辨的橘红色荧光带，再用成像仪进行拍照，以便于分析。（注：紫外光对眼睛有害，观察时戴上防护镜或眼镜，或隔着玻璃或有机玻璃观察）。 六、数据记录和处理 个人数据为下面凝胶中从左至右的第十一个谱带。明显有多条杂志谱带。 七、实验结果与分析 第十一条谱带，最前面有一个带，为未除尽的RNA,最下面也有一条特别亮的带，是细菌的基因组DNA，说明样品在与缓冲液在混合时不够充分。本次实验结果并不是很理想，有过多杂质，实验中处理步骤有问题。 八、心得与思考题 1、在提取质粒DNA的过程中， EDTA、 SDS、 NaOH、乙酸钾、酚-氯仿-异戊醇等试剂的作用是什么？ EDTA：络合掉Mg等二价离子，防止DNA酶对质粒分子的降解作用。 SDS：解聚核蛋白并与蛋白质分子结合使之变性。 NaOH：破坏氢键，使DNA分子变性。 酚：一种强烈的蛋白质变性剂，能非常有效地去除蛋白质，同时抑制了核酸酶的降解作用。 氯仿：有强烈的溶脂倾向，可以溶解细胞膜，同时溶解去除脂质类杂质，此外具有使蛋白质变性并分相的作用。 2、在质粒DNA的提取过程中，应注意哪些操作，为什么？ 在第一步振荡之后所有步骤中的混匀操作均需要动作轻柔，颠倒２－３次左右即可，切不可像原来的实验一样，用力混匀，这样很容易导致双链环状ＤＮＡ分子构型的破坏。 第６步中，若试剂瓶中酚、氯仿混合液分层，应该取下层的液体进行实验。 第６步中酚、氯仿的混合液可以多加一些，以确保将体系中蛋白质完全除去，防止 ＤＮＡ水解酶造成造成质粒ＤＮＡ的损失。 第６步中吸取上清液时，宁可放弃一些上清液也不可以将下层的酚吸入到离心管中。 第７步中，无水乙醇的量可以适当多加一些，以确保ＤＮＡ完全沉淀，减少损失。 3、琼脂糖凝胶电泳操作应注意哪些环节？ 每加完一个样品要换枪头以防互相污染。注意上样时要小心操作，避免损坏凝胶或将样品槽底部凝胶刺穿。