牛冷冻精液细菌菌落数检测
牛冷冻精液细菌菌落数检测 ?28?AnimalHusbandry&VeterinaryMedicine2006Vo1.38No.10
牛冷冻精液细菌菌落数检测
陆汉希
(南京农业大学动物科技学院,江苏南京210095) 摘要:详细介绍了牛冷冻精液细菌菌落数检测所需设备和材料,培养基和试剂,检测程序,操作步骤,注意事项等内容.该检测方法既方便又准 确且行之有效.此法还可用于其他家畜冷冻精液细菌菌落数的检测. 关键词:牛;冷冻精液;菌落;检测
中田分类号:$823.3文献标识码:B文章编号:0529-5130(2006)lO-0028-02
菌落总数测定用来判定牛冷冻精液被细菌污染的程度及卫 生质量,它反映冻精在生产过程中是否符合卫生要求,以便对 被检样品作出适当的卫生学评价.菌落总数的多少在一定程度 上标志着冻精卫生质量的优劣.
当被检冻精与培养基混合,在一定培养条件下,每个能够 生长繁殖的细菌细胞都可以在平板上形成一个可见的菌落.菌 落总数就是指在一定条件下(如需氧情况,营养条件,pH, 培养温度和时间等)每剂冻精检样所生长出来的细菌菌落总 数.按国家
标准
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方法
规定
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,在需氧情况下,37cc培养48h, 每剂冻精检样在普通营养琼脂平板上所生长的细菌菌落总数. 厌氧或微需氧菌,有特殊营养要求的以及非嗜中性的细菌,由 于现有条件不能满足其生理需求,故难以繁殖生长.因此菌落 总数并不表示实际中的所有细菌总数,同时菌落总数并不能区 分其中细菌的种类,所以菌落总数有时被称为杂菌数,需氧菌 数等.
收稿日期:2006-O1+14
作者简介:陆汉希(1961-),男,高级畜牧师.
"牛冷冻精液国家标准"对牛冷冻精液中细菌菌落数有 严格的要求,即每一剂量中不得超过1000个(即将公布的新. 标准为800个).原"牛冷冻精液"标准细菌菌落总数检测方 法较烦琐,不便操作,加之生产单位对此项工作没有引起足够 的重视,从而导致了这项检测工作在基层公牛站,牛场没有很 好地开展.这对牛冻精的使用者及母牛安全造成了隐患.制订 一
套既方便又准确的牛冻精细菌菌落数检测方法在生产和检验 工作中十分必要,为此我们探索出了一套行之有效的检测方 法.此法还可用于其他家畜冷冻精液细菌菌落数的检测. 1设备和材料
恒温培养箱,超净化工作台,冰箱(0—4?),恒温水浴 箱,天平,电炉,石棉网,三角烧瓶(容量为250mL),平皿 (直径为90mm),酒精灯,打火机,放大镜,菌落计数器,细 管剪,细管专用推针,棉绳,粗棉花,脱脂棉,牛皮纸,量 筒,称量纸,角匙,记号笔,电热压力蒸汽消毒器.
营养琼脂培养基:按GB4789.28-94中4.7规定…(医药 商店有成品出售),75%乙醇.
异较大,这是因为相关系数既包括2个变量的直接影响也包含 了间接影响,所以简单的相关系数不能真实地反映各性状之间 的内在联系,而通径分析可以真正地反映出2个性状之间的密 切程度.
2.4多元逐步回归分析
经过多元逐步回归分析中向前选择,向后淘汰和最大相关 法均得到同一最优回归方程:多=0.00128+1.00000x4+
0.99996x-0.00003x6.回归模型经方差分析结果为极显着 (:P<0.01),复相关系数为0.9999,说明拟合的多元回归 方程准确度较高.
3讨论与结论
仙湖肉鸭活重,屠宰率和全净膛率的变异系数较小,这3 个性状的遗传稳定性和群体均匀度较高;而胸肌率,腿肌率, 皮脂率和瘦肉率等性状具有较大的改良提高潜力. 对49日龄瘦肉率影响效果是腿肌率>胸肌率>皮脂率, 腿肌率,胸肌率与瘦肉率呈强的正相关,皮脂率与瘦肉率则呈 中等负相关.因此,在肉鸭的育种实践中,为了提高瘦肉率, 应把提高腿肌率,胸肌率作为主要的育种目标,降低皮脂率 次之.
筛选变量后构建的多元回归方程为:多=0.00128+ I.000OOx4+0.99996x5—0.00003x6,方程准确度很高(为 0.9999),回归模型经方差分析结果极显着(P<0.O1). 参考文献:
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[2]杨宁.家禽生产学[M].北京:中国农业出版社.2002; 289-292.
[3]唐启义,冯明光.实用统计分析及其数据处理系统[M].北 京:科学出版社,2002:294~10.
畜牧与兽医2006年第38卷第l0期?29?
2检测程序
菌落总数的检验程序基本操作一般包括:样品的解冻—倾 注平皿一培养48h一计数
报告
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3操作步骤
3.1准备
预先调整好下列仪器设备:培养箱温度调节至(36? 1)?;其中一台水浴箱调节至(37?1)?,用于解冻细管冷冻 精液,另一台水浴箱调节至(4|6?1)?,使存放于此经消毒 熔化后的营养琼脂降至(46?1)?待用;培养皿(可买已消
毒一次性使用的成品,这样可减轻好多工作量),酒精灯,酒 精棉球,打火机,记号笔,细管剪,细管专用推针等用具提前 放入超净化工作台内消毒.
3.2蕾养琼脂的制备
取营养琼脂培养基粉31g,加蒸馏水1000mL,加热煮沸 至完全溶解,分装经121?15min灭菌后备用.
3.3冷冻精液的解冻
从液氮罐中取出待检样品,迅速放人已盛有液氮的小型泡 沫盒或保温杯内,取一支细管冻精迅速泡入水浴中并晃动,待 溶解后立即取出,擦干细管水珠,待用.每一样品解冻二支, 发现爆管,裂管,漏管应废弃,另取冻精解冻.
3.4精液注入平皿
在超净化工作台内,点燃酒精灯,平皿盖盒面上用记号笔 标记上牛号,用酒精棉球擦抹整支细管,细管剪在酒精灯上来 回烘烤几下,剪去超声波封I=I端,用细管推针将整支细管的精 液注入灭菌平皿内.解冻后的细管,如发现超声波封口端有精 液,可抓住超声波封口端用力摔几下,使超声波封口端留出一 个完整的空腔,经这样操作后被剪去的一端不会留有精液,确 保整支精液注入平皿.
3.5平皿内加入适量营养琼脂
精液注入平皿后,应及时将凉至46?的营养琼脂培养基 (可放置于46??1?水浴保温)注入平皿约15mL,并转动 平皿使其混合均匀.同时将营养琼脂培养基倾入灭菌平皿内作 一
空白对照.
待琼脂凝固后,翻转平板.置(36?1)?恒温培养箱内 培养(48?2)h.
3.6菌落计数方法
做平板菌落计数时,应在光线较强处(如窗户旁),可用
肉眼观察.手持记号笔,见一个菌落在平皿表面点一下并默记 菌落个数.为便于观察可在平皿下垫一张有色的纸,也可用手 掌.平皿表面必须清洁,其表面粘附的粉尘极易被误认为菌 藩,此时可用手抹一下.如能抹掉者.就不是菌落,抹不掉 的,必要时用放大镜检查,以防遗漏.平板菌落计数时也可用 菌落计数器计数.
,.7平板菌落数的选择
一
个样品使用2个平板,应采用2个平板平均数.其中一 个平板有较大片状菌落生长时.则不宜采用,而应以无片状菌 落生长的平板作为该样品的菌落数;若片状菌落不到平板的一 半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘 以2以代表全皿菌落数.平皿内如有链状菌落生长时(菌落之 间无明显界线),若仅有一条链,可视为一个菌落;如果存在 不同来源的几条链,则应将每条链作为一个菌落计. 当计数平板内的菌落数过多(大于300时),但分布很均 匀,可取平板的一半或1/4计数.再乘以相应的2或4作为该 平板的菌落数.到达规定培养时间,应立即计数.如果不能立 即计数,应将平板放置于(0,4)?的冰箱内,但不得超过 24h.
3.8菌落数的报告
一
份样品的2个平板内菌落平均数就是该份样品每支细管 冷冻精液内的细菌菌落数.
4注意事项
操作中必须有"无菌操作"的概念,所用玻璃器皿必须 是完全灭菌的,不得残留有细菌或抑菌物质.所用细管剪,细 管专用推针等器具也必须进行消毒处理.
操作应当在超净工作台或经过消毒处理的无菌室进行.琼
脂平板在工作台暴露15min,每个平板不得超过l5个菌落. 倾注用培养基应在4|6?水浴内保温,温度过高会影响细 菌生长,过低琼脂易于凝固而不能与精液充分混匀.如无水 浴,应以皮肤感受较热而不烫为宜.
倾注培养基的量规定不一,从l2—20mL不等,一般以 15mL较为适宜.平板过厚可能影响观察,太薄又易于干裂. 倾注时,培养基底部如有沉淀物,应将底部弃去,以免与菌落 混淆而影响计数观察.
为使菌落能在平板上均匀分布,精液加入平皿后,应尽快 倾注培养基并旋转混匀,可正反2个方向旋转,检样从开始注 入平皿到倾注最后一个平皿所用时间不宜超过20min,以防止 细菌有所死亡或繁殖.
培养温度一般为37ac,培养时间一般为48h,培养箱应 保持一定的湿度,琼脂平板培养48h后,培养基失重不应超 过15%.为避免水份的过份蒸发,可在培养箱内放置一个存 有水的烧杯.
为了避免细管中的微小颗粒或培养基中的杂质与细菌菌落 发生混淆,不易分辨,可同时作一不加任何东西的琼脂培养基 平板,不经培养,而于4?环境中放置,以便计数时作对照 观察.
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在某些场合,为了防止细管冷冻精液中的小颗粒与菌落混 淆不清,可在营养琼脂中加入氯化三苯四氮唑(Trc),培养 后菌落呈红色,易于分辨.
参考文献:
[1]GB/T4789.2-1994.<中华人民共和国国家标准食品卫生微生 物学检验菌落总数测定>[S].
[2]GB/T4143-1984.<中华人民共和国国家标准牛冷冻精液> [s].