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QINGEN质粒大提(自己翻译)

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QINGEN质粒大提(自己翻译)QIAGEN质粒大提 提取前准备: 1.​ RNase A加入Buffer P1,终浓度100ug/ml,2-8℃保存。 2.​ 检查Buffer P2中SDS状态(低温析出),必要的话37℃预热。 3.​ 4℃遇冷Buffer P3。 准备材料: 1.​ 标准的细菌培养物品(接种环、培养皿、摇床等)。 2.​ 架子(垂直放置柱子。) 3.​ 冰 4.​ 70%酒精 5.​ 异丙醇 6.​ 质粒溶解液(TE,PH8.0或Tris.Cl,PH8.5) 7.​ 1.5-2.0ml离心管 8.​ 4℃离心机 提取步骤: ...

QINGEN质粒大提(自己翻译)
QIAGEN质粒大提 提取前准备: 1.​ RNase A加入Buffer P1,终浓度100ug/ml,2-8℃保存。 2.​ 检查Buffer P2中SDS状态(低温析出),必要的话37℃预热。 3.​ 4℃遇冷Buffer P3。 准备材料: 1.​ 标准的细菌培养物品(接种环、培养皿、摇床等)。 2.​ 架子(垂直放置柱子。) 3.​ 冰 4.​ 70%酒精 5.​ 异丙醇 6.​ 质粒溶解液(TE,PH8.0或Tris.Cl,PH8.5) 7.​ 1.5-2.0ml离心管 8.​ 4℃离心机 提取步骤: A)细菌培养、收获和裂解 1.新鲜培养板中挑取单克隆于2-5ml ALB培养基,37℃,300rpm培养8h。(使用的培养器皿体积需大于四倍的培养基体积) 2.按1/500-1/1000比例接种于ALB培养基,37℃,300rpm培养14-16h。高拷贝质粒:取100-200ul接种于100ml ALB培养基。低拷贝质粒:取250-500ul接种于500ml ALB培养基。(使用的培养器皿体积需大于四倍的培养基体积。培养的细菌密度达到3-4X10~9个/ml,这样得到的菌斑重量为3g/L培养基) 3.将获得的菌液4℃,6000g离心15min。(如果此时你想停止提取,可将菌斑冻于-20℃) 4.加入10ml Buffer P1充分重悬菌斑。(确保使用的容器足够装下裂解液,确保使用前加入RNase A,如果Buffer P1内加入LyseBlue,使用前轻柔晃动瓶身以确保LyseBlue混匀,必须确保菌斑充分混匀) 5.加入10ml Buffer P2,轻柔颠倒4-6次混匀彻底,室温(15-25℃)孵育5min。(不能涡旋混匀,这样会使基因断裂。此时溶液变粘稠。不要使裂解反应过程超过5min。加入Buffer P2后立即扣上盖子,避免空气中的CO2使其酸化。如果Buffer P1内加入LyseBlue,那么加入Buffer P2后细菌悬液变蓝,如果悬液不变蓝或仍可见棕色斑块,则继续混匀直到显色) 6.加入10ml Buffer P3,立刻轻柔颠倒4-6次彻底混匀,冰上孵育20min。(使用预冷的Buffer P3和冰浴可以加快沉降,加入Buffer P3后可见白色絮状沉淀,沉淀中含有基因组DNA,蛋白质,细菌碎片和KDS。裂解液需彻底混匀以确保钾、硫酸盐沉淀。如果混合物依然有粘性,那么继续混匀彻底中和溶液。如果使用LyseBlue,蓝色溶液变清。) B)提取上清 7.以4℃,不低于20000g离心30min,立刻取含有质粒的上清。(离心前,需再次混匀样品。离心需要在非玻璃器皿中进行,例如聚丙烯。离心后上清液清透。) 8.以4℃,不低于20000g离心15min再次离心,取上清。移取120ul上清作为样品1,用于 分析 定性数据统计分析pdf销售业绩分析模板建筑结构震害分析销售进度分析表京东商城竞争战略分析 以确定生长和裂解的条件是否合适 C)用QIAGEN-tip连接、清洗和洗提质粒DNA 9.向QIAGEN-tip 500中加入10mlBuffer QBT平衡柱子,通过重力使其自然流空。(QIAGEN-tip需要彻底流干,此过程不需要看守,当液面达到柱子上部时自然会停止。) 10.将从第8步获取的上清移入柱子,使其自然流下通过滤膜。(上清应该立刻移入柱子。如果时间停滞过长或者因为蛋白的继续沉降使其浑浊,在放入柱子之前需要重新离心。)移取120ul滤液作为样品2. 11.用2X30ml Buffer QC冲洗柱子。(Buffer QC自然通过柱子,第一遍冲洗足以将绝大多数质粒污染物洗脱,但是当提取量大时,第二遍就非常重要。)移取240ul滤液作为样3。 12.用15ml Buffer QF洗脱DNA。(用15ml或50ml离心管收集洗脱液。不推荐使用聚碳酸酯离心管,因为不能耐受后续步骤使用的酒精。注:如果产物大于45-50Kb,65℃预热洗脱Buffer有助于提高产量。) 移取120ul滤液作为样品4,用于分析。 D)沉淀、清洗、溶解DNA 13.加入10.5ml(0.7倍体积)室温异丙醇到洗脱液中沉淀DNA。立刻混匀,4℃,不低于15000g离心30min。小心弃上清。(一次性锥形底离心管可以选择4℃,5000g离心60min。异丙醇沉淀具有玻璃外观,比酒精沉淀的絮状含盐沉淀难发现。异丙醇沉淀贴壁不牢,弃上清时要非常小心。) 14.加入5ml室温70%酒精,不低于15000g离心10min。小心弃上清避免碰到沉淀。(一次性锥形底离心管可以选择4℃,5000g离心60min。70%酒精用来洗脱沉淀的盐,并且挥发的乙醇可以移走残余的异丙醇,是DNA提取更容易。) 15.空气中干燥沉淀5-10min,用合适体积的质粒溶解液(TE,PH8.0或Tris.Cl,PH8.5)溶解DNA。(溶解DNA时清洗侧壁,充分收集,特别是使用玻璃器皿时。应避免使用移液器反复吹打促进DNA混匀,这可能会导致DNA断裂。沉淀过于干燥会导致DNA难以溶解。DNA溶液最好保存在微碱性环境中,酸性Buffer难以溶解DNA。)
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