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腺相关病毒使用操作手册
一、 腺相关病毒(rAAV)的储存与稀释:
1. 病毒的储存:收到病毒液后在很短时间内需使用腺相关病毒进行实验,可以将病毒
暂时放置于 4 ℃保存;如需长期保存请放置于-80℃(病毒置于冻存管,并使用封口膜
封口)
① 病毒可以存放于-80℃ 6 个月以上;但如果病毒储存时间超过 6 个月,建议在使用
前重新滴定病毒滴度。
② 反复冻融会降低病毒滴度:每次冻融会降低病毒滴度 10%;因此在病毒使用过程中
应尽量避免反复冻融,为避免反复冻融,建议收到病毒后按照每次的使用量进行分装。
2. 病毒的稀释:如果需要稀释病毒,请将病毒取出置于冰浴融解后,使用培养目的细
胞用 PBS 或无血清培养基(含血清或含双抗不影响病毒感染)。混匀分装后 4℃保存(请
尽量在三天内用完) 分装后使用。
二、 腺相关病毒用于体外(In Vitro)实验:
感染培养原代细胞和建系细胞。腺相关病毒对各种细胞和组织的亲嗜性不同,在
使用腺相关病毒之前可以通过查阅相关文献,了解腺相关病毒对您的目的细胞的亲嗜
性,感染复数(MOI 值)以及在体(In Vivo)注射所需要的病毒量。如果没有相关文
献支持,可以通过感染预实验得到合适的感染复数(MOI 值)(使用 24孔板检测病毒
对目的细胞的亲嗜性)。
腺相关病毒感染目的细胞预实验:
1. 腺相关病毒感染目的细胞预实验注意事项:
① 测定腺相关病毒对目的细胞的亲嗜性时,需要同时设置对腺相关病毒亲嗜性较高的
细胞(HEK293T,Hela)作为平行实验的对照细胞。
② 在进行腺相关病毒感染实验时,可以用完全培养基(培养目的细胞用)稀释;理论
上,含有血清,双抗或者其他营养因子的完全培养基不影响腺相关病毒的感染效率。
③ 一般腺相关病毒单位为 TU/ml,或 Vg/mL. TU/ml 即每毫升中含有具有生物活性的
病毒颗粒数。如:病毒滴度为>1X108 TU/ml 即每毫升病毒液中至少含有 1X108个具有
生物活性的腺相关病毒颗粒。Vg/mL 即每毫升中含有的病毒颗粒数,无论是否具有生
物活性,一般用定量 PCR测定。
2. 以 24 孔培养板为例,进行目的细胞和 HEK293T 细胞的感染预实验前按照不同的
MOI设置不同的感染孔,并根据 MOI和细胞数量计算所需要的病毒量,如有必要可以
使用 PBS溶液或者无血清培养基稀释病毒原液。
⑴ 第一天,准备细胞:在 24 孔培养板接种若干孔,每个孔内接种 3~5X104个目的细
胞,铺板时细胞的融合率为 50%左右,每孔培养基体积为 100 μl;进行病毒感染时细
胞的融合度约为 70%左右。
⑵ 第二天,准备病毒:取出 4℃保存的病毒,使用台式离心机离心 20 秒(使病毒完
全悬于离心管底部即可);如果是冻存在-80℃的病毒需要先在冰上融化后使用。亦可
以根据
实验室
17025实验室iso17025实验室认可实验室检查项目微生物实验室标识重点实验室计划
的实际情况将按照 MOI 准确计算好的腺相关病毒稀释到培养基中,并尽
可能保证所获得的含有腺相关病毒的培养基的总体积为最小体积,以期获得最佳的感
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染效率。
⑶ 第二天,感染目的细胞:病毒准备好之后,从培养箱中拿出细胞,首先观察细胞生
长状态,如细胞状态较好则可以开始实验。
① 使用移液器吸取准确体积的病毒液加入准备好的培养基。
② 吸去培养器皿中的培养基(如果细胞生长良好,密度适宜,则不用换液)。
③ 在目的细胞和对照细胞中分别加入计算好的病毒液。
④ 混匀后放于二氧化碳培养箱(37℃、5% CO2)孵育过夜。
注意:感染前细胞的状态好坏对最终的感染效果高低影响很大,所以务必保证加病毒
之前细胞处于良好的生长状态。亦可以将预先准备好的培养基和腺相关病毒的混合液
直接加入培养器皿中。腺相关病毒对目的细胞的感染效率较低,通过提高 MOI 值可以
提高病毒的感染效率,但是当 MOI高于 20时,我们建议在培养基中加入 polybrene(8
μg/ml左右)来提高病毒的感染效率。
⑷ 第三天,更换培养液:一般在 24 小时候后将含有腺相关病毒的培养液更换成正常
培养液;在感染后观察细胞状态,如果腺相关病毒对细胞有明显毒性作用而影响细胞
生长状态,可以最短在加病毒 4小时候更换新鲜培养液后继续培养(建议在 8-12小时
更换为宜)。第一次换液后,如果腺相关病毒对细胞没有明显毒性作用,按照正常培养
条件培养换液。
⑸ 第六天,感染效率检测:在倒置荧光显微镜观察荧光,估计腺相关病毒感染目的细
胞的效率;如果由于目的基因较大而造成选择的载体不能携带 Marker Gene的,可以
通过 Real-time PCR 检测目的基因的
表
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达来评估感染效率。
注意:
1. 有些腺相关病毒载体上带有 GFP 绿色荧光蛋白,使用者可以在病毒感染 48小时后
用倒置荧光显微镜观察 GFP 绿色荧光,以观察病毒对目的细胞的感染情况。如果腺相
关病毒载体携带其他 Marker Gene 如 RFP\BFP 可以用荧光显微镜在对应的激发光波
长下观察荧光表达的情况。
2. 腺相关病毒表达时间较慢,荧光表达所需时间较长,建议感染后 48 小时后观测荧
光表达。感染后的细胞可以连续培养一周,通过观察荧光的表达时间和表达强度来确
定腺相关病毒对目的细胞的感染情况。感染期间请根据细胞生长的情况对细胞进行及
时换液,以保证细胞良好的生长状态。
三、 腺相关病毒安全使用规范:
腺相关病毒载体源于非致病的野生型腺相关病毒,但使用时仍请参照如下所示进
行实验:
1.病毒操作时最好使用生物安全柜。如果使用普通超净工作台操作病毒,请不要打开
排风机。
2.病毒操作时请穿实验服,带口罩和手套。
3.操作病毒时特别小心不要产生气雾或飞溅。如果操作时超净工作台有病毒污染,请
立即用 70%乙醇加 1% SDS 溶液擦拭干净。接触过病毒的枪头,离心管,培养板,培
养液请于 84 消毒液或 1% SDS 中浸泡过夜后弃去。
4.用显微镜观察细胞感染情况时应遵从以下步骤:拧紧培养瓶或盖紧培养板。用 70%
乙醇清理培养瓶外壁后到显微镜处观察拍照。离开显微镜实验台之前,用 70%乙醇清
理显微镜实验台。
5.如需要离心,应使用密封性好的离心管,或者用封口膜封口后离心,而且尽量使用
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组织培养室内的离心机。
6.脱掉手套后,用肥皂和水清洗双手。
四、相关专业术语:
MOI:病毒感染复数传统的 MOI 概念起源于噬菌体感染细菌的研究。其含义
是感染时噬菌体与细菌的数量比值,也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。噬菌
体的数量单位为 pfu。一般认为MOI 是一个比值,没有单位,其实其隐含的单位是
pfu number/cell。后来 MOI 被普遍用于病毒感染细胞的研究中,含义是感染时病毒
与细胞数量的比值,本手册中提到的 MOI都是沿用这个概念。然而,由于病毒的数
量单位有不同的表示方式,从而使 MOI 产生了不同的含义。能产生细胞裂解效应的
病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用 pfu表示病毒数量,因此其 MOI 的含义与传统
的概念相同。
五、 细胞培养器皿的相关参数:
Flask/Dish Surface (mm2) Cell number Media Volume
96 well plate 50 1.5-5.0×104 100 μl
48 well plate 100 3.0×104-1.0×105 200 μl
24 well plate 200 8.0×104-2.0×105 500 μl
12 well plate 401 1.6-4.0×105 1.0 ml
6 well plate 962 3.0-8.0×105 2.0 ml
35mm 962 3.0-8.0×105 2.0 ml
60mm 2827 1.0-2.5×106 6.0 ml
100mm 7854 2.5-6.4×106 10.0 ml