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酵母基因组DNA提取试剂盒

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酵母基因组DNA提取试剂盒 ◆ TRIpure Reagent 抽提指南 ◆ 目录号 RP02 ◆ 使用手册 ◆ 实验室使用,仅用于体外 ◆ TRIpure Reagent 抽提指南 ◆ 目录号 RP02 ◆ 使用手册 ◆ 实验室使用,仅用于体外 ◆ TRIpure Reagent 抽提指南 ◆ 目录号 RP02 ◆ 使用手册 ◆ 实验室使用,仅用于体外 ◆ ...

酵母基因组DNA提取试剂盒
◆ TRIpure Reagent 抽提指南 ◆ 目录号 RP02 ◆ 使用手册 ◆ 实验室使用,仅用于体外 ◆ TRIpure Reagent 抽提指南 ◆ 目录号 RP02 ◆ 使用手册 ◆ 实验室使用,仅用于体外 ◆ TRIpure Reagent 抽提指南 ◆ 目录号 RP02 ◆ 使用手册 ◆ 实验室使用,仅用于体外 ◆ 酵母基因组DNA提取试剂盒 ◆ 目录号 1428 ◆ 使用手册 ◆ 实验室使用,仅用于体外 - 1 -  试剂盒组成、储存、稳定性: 试剂盒组成 保存 50 次 (142801) 100 次 (142802) 200 次 (142803) 酵母裂解液 室温 15 ml 30 ml 60 ml 蛋白沉淀液 室温 5 ml 10 ml 20 ml DNA 溶解液 室温 5 ml 5 ml 10 ml 本试剂盒在室温储存 12 个月不影响使用效果。 储存事项: 1. 环境温度低时酵母裂解液中某些去污剂成份会析出出现浑浊或者沉淀,可在 37℃ 水浴加热几分钟,轻轻旋摇,即可恢复澄清,不要剧烈摇晃,以免形成过量的泡 沫。 2. 蛋白沉淀液可能出现析出和沉淀,可以在 37℃水浴几分钟帮助重新溶解,如果不 能完全溶解,也不影响使用效果,直接取用上层溶液即可。 3. 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH 值变化,各溶液使用后应及时 盖紧盖子。  产品介绍: 本试剂盒用于快速的从酵母中提取基因组 DNA。在针对酵母细胞特点配制的酵母 裂解液作用下, 酵母细胞被裂解释放出基因组 DNA,然后蛋白沉淀液选择性沉淀去 除蛋白,最后纯净的基因组 DNA 通过异丙醇沉淀并重溶解于 DNA 溶解液。 - 2 -  产品特点: 1. 不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂。 2. 快速,简捷,整个过程可在 1 个小时内完成。 3. 结果稳定,产量高(比离心柱型的产量高一倍以上),OD260/OD280 典型的比值 达 1.7~1.9,长度可达 50Kb-150kb,可直接用于 PCR,Southern-blot 和各种酶切 反应以及文库构建。  操作步骤:(实验前请先阅读 注意事项 软件开发合同注意事项软件销售合同注意事项电梯维保合同注意事项软件销售合同注意事项员工离职注意事项 ) 1. 吸取 1.5ml 酵母培养物到一个 1.5ml 离心管; 12,000rpm 离心 2 分钟,尽可能弃 上清,必要时候可以用枪吸去。 2. 高速涡旋振荡,打散重悬酵母细胞团。 3. 加入 300μl酵母裂解液,涡旋振荡混匀,或者用 1 毫升的枪头反复吹打混匀。 酵母细胞的重悬分散对下一步裂解非常重要,必须充分分散重悬。 4. 将裂解物放置在 70℃水浴 15-30 分钟。 如果产量低,可以适当提高水浴温度和延长水浴时间,中间可以涡旋振荡混匀几 次帮助裂解。 5. 冰上至少 5 分钟使回复到室温。 6. 在回复到室温的裂解物内加入 100μl 蛋白沉淀液后,在涡旋振荡器上高速连续振 荡混匀 20秒。混匀后可能见到一些小的蛋白团块。冰浴 5 分钟。 7. 13,000rpm 离心 5-10 分钟。这时应该可以见到管底蛋白沉淀,也可能见到一些蛋 白沉淀漂浮在液体表面。 - 3 - 8. 小心缓慢吸取上清到一个新的 1.5ml 离心管中,不要吸到沉淀。 吸取上清时,注意不要吸到管底的和漂浮在液体表面的蛋白沉淀。如果不小心将 蛋白沉淀转入新的离心管中,可再次离心 2分钟后取上清。 9. 加入等体积的室温异丙醇(约 400μl),颠倒 30 次混匀或者直到出现絮状 DNA 沉 淀(或者白色浑浊沉淀)。 10. 12,000rpm 离心 1 分钟,在管底可以见到白色的 DNA 沉淀块,倒弃上清。 11. 加入 1ml 70%乙醇,颠倒几次漂洗 DNA 沉淀,12,000rpm 离心 1 分钟, 倒去上 清(注意不要把 DNA 沉淀倒掉了),倒置后在吸水纸上轻敲几下以控干残留乙醇, 还可以用枪头小心吸掉管底沉淀周围和管壁的残留乙醇,空气晾干沉淀几分钟。 注意不要干燥过头,否则 DNA 极其难溶;也不能残留太多乙醇,否则乙醇可能 抑制下游如酶切反应。 12. 加入 40μl DNA 溶解液重新水化溶解 DNA 沉淀,轻弹管壁混匀,可以放置在 65℃ 温育 30-60 分钟(不要超过一小时),也可以在室温或者 4℃放置过夜来重新水化 DNA。期间不时的轻弹管壁帮助重新水化 DNA。 13. 加入 10-15μl RNase A(10mg/ml),或者 1-2μl RNase A(100mg/ml)颠倒混匀, 37℃温育 30-60 分钟去除残留 RNA。 该步骤主要作用为去除残留的 RNA,如果残留 RNA 多,可以适当延长时间。如 果残留 RNA 不影响实验,可略去该步骤。如果残留的 RNA 酶可能影响实验,也 可以用等体积酚/氯仿抽提去除,然后用标准的乙醇沉淀回收 DNA。 14. DNA 可以存放在 2-8℃,如果要长时间存放,可以放置在-20℃。
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