土壤脱氢酶活性的测定
一、实验原理
脱氢酶的正式命名是AH：B氧化还原酶，广泛存在于动植物组织和微生物细胞内，它能酶促一定的基质中脱出氢而进行氧化作用。脱氢酶的种类因电子供给体和接受体的特异性而有不同。单位时间内脱氢酶活化氢的能力
表
关于同志近三年现实表现材料材料类招标技术评分表图表与交易pdf视力表打印pdf用图表说话 pdf
现为它的酶活性。通过测定土壤中微生物的脱氢酶活性，可以了解微生物对土壤中有机物的氧化分解能力，即土壤酶的活性。
已知受氢体可接受脱氢酶脱出的氢原子，根据接收氢原子的量可以判断脱氢酶的活性。如无色的氯化三苯基四氮唑（TTC，俗称红四唑）接受氢后变成红色的三苯基甲瓒（TF），根据产生红色的色度进行比色定量分析，就可以判断脱氢酶的活性。通常，吸光度越大（红色越深），脱氢酶活性越大。
二、实验材料、试剂和仪器
1．材料：过0.9mm孔径筛的土壤样品，8g
2．试剂：0.36%Na2SO3溶液，15ml
Tris-HCl缓冲液（PH=7.6），45ml
0.4%TTC,7.6ml
Na2S2O4，十几粒
甲醛，10ml
丙酮，20ml
3．仪器：50ml具塞比色管，6只
比色管架，1只
1~5ml移液枪，1只（枪头3个）
100~1000ul移液枪1只（枪头1个）
药匙1个
水浴锅1个
分光光度计1台
分析天平1台
离心管4只
培养箱1台
离心机1台
三、实验步骤
1．
标准
excel标准偏差excel标准偏差函数exl标准差函数国标检验抽样标准表免费下载红头文件格式标准下载
曲线的绘制
（1）按下表配制系列浓度的TTC标准溶液。
序号
0
1
2
3
4
5
0.36%Na2SO3（ml）
2.5
2.5
2.5
2.5
2.5
2.5
Tris-HCl(ml)
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
0.4%TTC(ml)
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.6
配成的TTC标准溶液的浓度（(g/ml）
0
8
16
24
32
48
（2）显色。
用药匙向每只比色管中各加入少许连二亚硫酸钠（Na2S2O4），混匀，使TTC全部还原为红色的TF。用1~5ml移液枪向各管滴加1ml甲醛终止反应，摇匀后再加入2ml丙酮震荡摇匀，37℃水浴10min。
（3）测定吸光度，绘制标准曲线。
在485nm波长下测定各管溶液的吸光度A，并以A为纵坐标，TTC浓度为横坐标，绘制出TTC标准曲线。
2．土壤脱氢酶活性的测定
（1）培养并显色（此步骤由助教预先完成）。
首先，按下表向四只离心管中分别加入以下物质
对照组
土样1
土样2
土样3
过2mm筛的土样
2g
2g
2g
2g
0.4%TTC
0ml
2ml
2ml
2ml
蒸馏水
2ml
0ml
0ml
0ml
然后，将以上四只离心管避光，37℃保温培养12~24h。
（2）培养结束后，用1~5ml可调式移液枪向各管分别加入1ml甲醛终止反应，再分别加入2ml丙酮震荡并于37℃下水浴保温10min。
（3）离心。将各离心管置于离心机中，4000r/min离心5min。
（4）测吸光度。取上清液在485nm波长下测定吸光度A，在标准曲线上查出相应的TTC浓度。
3．土壤脱氢酶活性计算。
脱氢酶活性=ABC
式中，A为由标准曲线上查出的TTC浓度（(g/ml）；B为培养时间校正值（h）;C为比色时稀释倍数（当吸光度值大于0.8时，要适当稀释，使其在0.8以下）
四、实验注意事项
1．所有操作尽量在避光条件下进行。脱氢酶最适反应温度为30~37℃，最适pH值为7.4~8.5，因此要控制好水浴锅的温度和缓冲液的pH。
2．取用甲醛时要小心，如若沾到皮肤上要迅速用自来水冲洗。
3．加入还原剂连二亚硫酸钠时，要保证各管加入的量几乎相同，防止因加入不同量的还原剂造成差异。
4．离心管经摇晃后会在管壁上沾有土，因此离心后取上清液测吸光度时，可用吸管吸取上清液到比色皿中，避免吸入土壤颗粒。
5．用过的比色皿如果内壁沾有颜色而难以清洗，可用硝酸浸泡。
五、思考与讨论
影响脱氢酶活性的因素有哪些？
答：1.反应终止剂的选择：本实验用甲醛作为终止剂，因其能抑制酶活性而使反应终止。但终止剂不止甲醛一种，例如浓硫酸也可作终止剂。但加入浓硫酸会使培养液褪色，背景值增大，且可能长时间会发生茶色反应，影响吸光度的测定。
2.萃取剂的影响：比起其它萃取剂，丙酮的萃取效果较好，吸光度大，与水互溶，不会发生液液分层现象，TF会均匀分布在水与萃取剂的混合液中。
3.TTC浓度的影响：TTC浓度影响很大，浓度上升时，TF的产量也增大。但从已有研究来看，当TTC浓度过大时，TF产量会下降。过高的TTC浓度不仅不会促进TTC还原反应，反而会抑制酶活性，使反应终止。
4.温度和pH的影响：反应的最适温度为30~37℃，最适pH为7.4~8.5，温度较低或较高都会使酶活性受到抑制。
5.培养时间的影响：根据酶活性的测定原则，培养时间应尽量短些，以避免因基质浓度下降、产物的形成以及酶本身的变性所带来的不良影响。但培养时间过短会使得酶促反应可生成的被检测物质的量太少，难以定量检测，因此应选择合适的培养时间。
六、实验前准备工作
1．土样的采集和预处理
（1）本实验所用土壤采自大港。
（2）土壤采集后，通过风干、磨碎、过筛、混合、分装，制成满足分析要求的土壤样品。
2．器皿的清洗和溶液的配制（溶液的配制量要根据实验人数计算，避免不够和浪费）
（1）配制500ml pH 为7.6的0.5mol/l的Tris-HCl缓冲溶液：称取Tris（三羟甲基氨基甲烷，分子量121.4）30.285g溶于蒸馏水，加入1N的HCl 210ml，定容至500ml。
（2）配制100ml 0.4%的TTC溶液：称取0.4gTTC溶于0.5ml Tris-HCl缓冲溶液中，用蒸馏水定容至100ml。（注：TTC即氯化三苯基四氮唑，又称红四唑）
（3）配制500ml 0.36%的Na2SO3溶液：称取1.8gNa2SO3溶于蒸馏水，定容至500ml。
3.提前12~24h培养土样。
2011.12.20
浙公网安备 33021202002483