蛋白质含量测定方法比较914912826

蛋白质含量测定方法比较914912826 蛋 白 质 测 定 方 法 比 较 简介 蛋白质,protein,是生命的物质基础,没有蛋白质就没有生命。因此,它是与生命及与各种形式的生命活动紧密联系在一起的物质。食物蛋白质的质和量、各种氨基酸的比例,关系到人体蛋白质合成的量,尤其是青少年的生长发育、孕产妇的优生优育、老年人的健康长寿,都与膳食中蛋白质的量有着密切的关系。人体的生长、发育、运动、遗传、繁殖等一切生命活动都离不开蛋白质。生命运动需要蛋白质,也离不开蛋白质。 蛋白质含量测定主要有五种方法,分别是凯式定氮法、双缩脲法、紫外吸收法、酚试剂法和考马斯亮蓝法。这五种方法各有特点,优缺点明确。 下面是我依照原理,优缺点,应用范围所对五种方法作的一些简单介绍。 原理 凯氏定氮法 蛋白质是含氮的化合物。食品与浓硫酸和催化剂共同加热消化,使蛋白质分解,产生的氨与硫酸结合生成硫酸铵,留在消化液中,然后加碱蒸馏使氨游离,用硼酸吸收后,再用盐酸 标准 excel标准偏差excel标准偏差函数exl标准差函数国标检验抽样标准表免费下载红头文件格式标准下载 溶液滴定,根据酸的消耗量来乘以蛋白质换算系数,即得蛋白质含量。因为食品中除蛋白质外,还含有其它含氮物质,所以此蛋白质称为粗蛋白。 双缩脲定氮法 双缩脲,NHCONHCONH,是两 个分子脲经180?左右加热,放出一个33 分子氨后得到的产物。在强碱性溶液中,双缩脲与CuSO形成紫色络合物,称4 为双缩脲反应。凡具有两个酰胺基或两个直接连接的肽键,或能过一个中间碳原 子相连的肽键,这类化合物都有双缩脲反应。 HO 2 O=C C=O HN NH R-CH CH-R O=C Cu C=O HN NH R-CH CH-R HO 2 紫色络合物 紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比,而与蛋白质分子量及氨基酸成 分无关,故可用来测定蛋白质含量。测定范围为1~10mg蛋白质。干扰这一测 定的物质主要有,硫酸铵、Tris缓冲液和某些氨基酸等。 紫外吸收定氮法 双缩脲法是传统的分光光度法测定蛋白质的方法,当含有两个或者两个以上 肽键的物质和碱性的硫酸铜反应时,形成紫色的络合物,这个颜色产物是肽键中的氮原子和铜离子配价结合的结果。蛋白质分子中,酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸残基的苯环含有共轭双键,使蛋白质具有吸收紫外光的性质。形成颜色产物的量取决于蛋白质的浓度。实际测定时,必须预先用标准蛋白质溶液制作一个标准校正曲线,通常用牛血清白蛋白水溶液做蛋白质标准溶液。不同浓度的标准蛋白质溶液加入双缩脲试剂后,反应生成的颜色产物用紫外- 可见分光光度计在540nm 波长下测定吸光度,以双缩脲试剂加缓冲或水作空白对照。然后将测得的值分别对蛋白浓度(mg/ ml) 作图,得标准曲线。未知蛋白样品用双缩脲试剂做同样处理,根据测得吸光度值在标准曲线上直接查得未知蛋白质样品中得蛋白质浓度。 酚试剂法 此法的显色原理与双缩脲方法是相同的,只是加入了第二种试剂,即Folin—酚试剂,以增加显色量,从而提高了检测蛋白质的灵敏度。这两种显色反应产生深蓝色的原因是,,在碱性条件下,蛋白质中的肽键与铜结合生成复合物。,Folin—酚试剂中的磷钼酸盐—磷钨酸盐被蛋白质中的酪氨酸和苯丙氨酸残基还原,产生深蓝色,钼兰和钨兰的混合物,。在一定的条件下,蓝色深度与蛋白的量成正比。 考马斯亮蓝法 考马斯亮兰G-250染料,在酸性溶液中与蛋白质结合,使染料的最大吸收峰的位置,,max,,由465nm变为595nm,溶液的颜色也由棕黑色变为兰色。经研究认为,染料主要是与蛋白质中的碱性氨基酸,特别是精氨酸,和芳香族氨 基酸残基相结合。 在595nm下测定的吸光度值A,与蛋白质浓度成正比。 595 优势 凯氏定氮法 重现性好,是目前分析有机化合物含氮量常用的方法,是一种蛋白质测定的经典方法, ,测试结果准确。 双缩脲定氮法 较快速 ,不同的蛋白质产生颜色的深浅相近,以及干扰物质少。主要的缺点是灵敏度差。因此双缩脲法常用于需要快速,但并不需要十分精确的蛋白质测定。 紫外吸收定氮法 对各种蛋白质呈色基本相同;特异性和准确度好,精密度好;呈色稳定性好,试剂单一,方法简便。快速,不消耗样品,测定后仍能回收使用。 酚试剂法 1. 灵敏度高,比双缩脲法灵敏约100倍。 2. 操作简单,不需要特殊仪器设备。 考马斯亮蓝法 ,1,灵敏度高,据估计比Lowry法约高四倍,其最低蛋白质检测量可达1,g。这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大,蛋白质,染料复合物有更高的消光系数,因而光吸收值随蛋白质浓度的变化比Lowry法要大的多。 ,2,测定快速、简便,只需加一种试剂。完成一个样品的测定,只需要5分钟左右。由于染料与蛋白质结合的过程,大约只要2分钟即可完成,其颜色可以在1小时内保持稳定,且在5分钟至20分钟之间,颜色的稳定性最好。因而完全不用像Lowry法那样费时和严格地控制时间。 ++2+ ,3,干扰物质少。如干扰Lowry法的K、Na、Mg离子、Tris缓冲液、糖和蔗糖、甘油、巯基乙醇、EDTA等均不干扰此测定法。 缺点 凯氏定氮法 操作比较繁复,费时,试剂消耗量大。且此法测定的蛋白质含量实际上包括了核酸,生物碱,含氮类脂,卟啉,含氮色素等非蛋白质含氮化合物。 双缩脲定氮法 不太灵敏,不同蛋白质显色相似。 紫外吸收定氮法 准确度较差,干扰物质多,在用标准曲线法测定蛋白质含量时,对那些与标准蛋白质中酪氨酸和色氨酸含量差异大的蛋白质,有一定的误差。故该法适于用测定与标准蛋白质氨基酸组成相似的蛋白质。若样品中含有嘌呤、嘧啶及核酸等吸收紫外光的物质,会出现较大的干扰。核酸的干扰可以通过查校正表,再进行计算的方法,加以适当的校正。但是因为不同的蛋白质和核酸的紫外吸收是不相同的,虽然经过校正,测定的结果还是存在一定的误差。 此外,进行紫外吸收法测定时,由于蛋白质吸收高峰常因pH的改变而有变化,因此要注意溶液的pH值,测定样品时的pH要与测定标准曲线的pH相一致。 酚试剂法 费时间较长,要精确控制操作时间,标准曲线也不是严格的直线形式,且专一性较差,干扰物质较多。对双缩脲反应发生干扰的离子,同样容易干扰Lowry反应。而且对后者的影响还要大得多。酚类、柠檬酸、硫酸铵、Tris缓冲液、甘氨酸、糖类、甘油等均有干扰作用。浓度较低的尿素,0.5%,,硫酸纳,1%,,硝酸纳,1%,,三氯乙酸,0.5%,,乙醇,5%,,乙醚,5%,,丙酮,0.5%,等溶液对显色无影响,但这些物质浓度高时,必须作校正曲线。含硫酸铵的溶液,只须加浓碳酸钠—氢氧化钠溶液,即可显色测定。若样品酸度较高,显色后会色浅,则必须提高碳酸钠—氢氧化钠溶液的浓度1~2倍。进行测定时,加F olin—酚试剂时要特别小心,因为该试剂仅在酸性pH条件下稳定,但上述还原反应只在pH=10的情况下发生,故当Folin一酚试剂加到碱性的铜—蛋白质溶液中时,必须立即混匀,以便在磷钼酸—磷钨酸试剂 被破坏之前,还原反应即能发生。 考马斯亮蓝法 ,1,由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此Bradford法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差,在制作 标准曲线时通常选用 ,—球蛋白为标准蛋白质,以减少这方面的偏差。 ,2,仍有一些物质干扰此法的测定,主要的干扰物质有,去污剂、 Triton X-100、十二烷基硫酸钠,SDS,和0.1N的NaOH。,如同0.1N的酸干扰Lowary法一样,。 ,3,标准曲线也有轻微的非线性,因而不能用Beer定律进行计算,而只能用标准曲线来测定未知蛋白质的浓度。 应用范围 凯氏定氮法 适用样品广泛是国家标准第一法 。适合于各种食品中蛋白质的测定以及各类动植物蛋白测定。适用于0.2~ 1.0mg氮,误差为 ,2, 双缩脲定氮法 适用于1,20mg氮。 紫外吸收定氮法 适用于柱层析洗脱液的快速连续检测,因为此时只需测定蛋白质浓度的变化,而不需知道其绝对值。适用于50,100,g氮。 酚试剂法 可检测的最低蛋白质量达5,g。通常测定范围是20~250,g。 考马斯亮蓝法 适用于1,5,g氮。 自己的想法 凯氏定氮法是目前分析有机化合物含氮量常用的方法, 是一种蛋白质测定的经典方法, 适用样品广泛, 测试结果准确。而双缩脲法和考马斯亮蓝染色法则测试过程简单、迅速, 在可以准确配取标准蛋白溶液而准确性要求不高的测试中可以根据含氮量的不同选择这两种方法。紫外吸收法对有色被测样品是不适用的,在测无色样品时, 由于其操作简便、迅速, 不消耗样品, 低浓度盐类不干扰, 因此也是经常被采用的蛋白质测定方法。而怎样对样品进行预处理以达到紫外吸收法的测定条件也是我们今后需要探索的。而现在,科学家已经对凯氏定氮装置进行了改进,用高锅做水蒸气发生器,串连几套定氮仪,可同时测定几份样品。节省时间,提高了工作效率。改进后的方法适用于批量食品蛋白质的测定,具有准确、快速、简便、低耗、稳定的优点。 关于蛋白质的测定,随着科技的不断发展,技术也在不断的革新。考马斯亮 蓝法替代了双缩脲法就是最好的证明。对于蛋白质测定,选择合适的方法是及其重要的。不同的蛋白质含量,不同的实验时间长短,不同的仪器要求都影响着我们对蛋白质测定方法的选择。我相信在不久的将来,聪明如我们,一定能发现更多,更好,更简便的蛋白质测定方法。这是我们所追求的。