分子标记技术
模块八 分子标记技术
一、SSR技术
1.实验目的
利用现代分子生物学技术揭示DNA序列的遗传多态性即建立DNA水平上的遗传标记。为分子遗传图谱的构建、遗传多样性分析与种质鉴定、重要性状基因定位与图位克隆、转基因生物鉴定、分子标记辅助育种等研究奠定实验技能基础。
通过此实验了解和掌握利用SSR和AFLP分子标记检测植物基因组DNA的遗传多态性的基本原理和实验方法。
2. 实验原理
SSR:根据SSR两端保守的单拷贝序列设计一对特异引物,通过PCR技术将其间的核心微卫星DNA序列扩增出来,利用电泳分析技术就可获得其长度多态性。每个SSR座位两侧一般是相对保守的单拷贝序列,扩增每个位点的微卫星DNA序列,再经聚丙烯酰胺凝胶电泳,比较扩增带的带型,就可检测到不同个体在某个SSR座位上的多态性。
3. 实验仪器
离心机、移液器(100-1000ul,10-50ul)、PCR仪、垂直板电泳设备。
4. 实验试剂
MgCl,引物,dNTP,10ХPCR缓冲液,DNA聚合酶,无菌去离子水。 2
5. 实验方法
(1)将200 µL离心管、
模板
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DNA、引物、dNTP、10 × buffer、无菌去离子水和DNA聚合酶置于
冰上溶解。
(2)依次向无菌的200 µL离心管中加入如下成份,轻轻混匀,离心去除气泡。
模板DNA 20-60 ng
MgCl2 15-40 nmol
引物(各) 2-8 pmol
dNTP 1-5 nmol
PCR缓冲液 1Х
DNA聚合酶 1-5 U
Total 20 µL
(3)将离心管置于PCR仪中,按照以下程序进行PCR反应。
1
94 ? 2 min
94 ? 50 sec
50-65 ? 30 sec 35循环
72 ? 90 sec
72 ? 7 min
4 ? ?
(4)变性聚丙烯酰胺凝胶电泳:利用聚丙烯酰胺凝胶检测SSR-PCR结果。SSR-PCR扩增产物可能
仅仅存在几个碱基的差异,通常采用聚丙烯酰胺凝胶(银染体系)电泳方法检测。相对于琼脂
糖凝胶电泳而言,聚丙烯酰胺凝胶电泳能够更好的区分微小片断的差异,能够检出的等位基因
位点多,多态性信息含量值较高,因此适用于SSR标记的结果检测。两种银染检测体系是在聚
丙烯酰胺凝胶电泳结束后,用固定剂将核酸固定到凝胶上,使银染剂中的银离子与核酸牢固结
合,再通过还原剂将银离子还原而发生显色反应。
6. 实验结果
SSR-PCR聚丙烯酰胺凝胶电泳结果
7. 注意事项
2+由于SSR技术是基于PCR的一种分子标记,所以模板DNA、DNA聚合酶、dNTP以及Mg的浓度等因素会影响SSR的结果。如果参与反应的某些因子条件不适合,则会导致图谱弥散状背景的产生,扩增产物的消失以及电泳谱带位置的改变。改进反应条件的措施主要有: (1)保证DNA模板的质量。DNA模板的质量直接影响到PCR的效果,要求模板中的蛋白质、糖
及其它杂质含量低。
(2)不同引物的退火温度应根据引物的T略有变动。 m
2+(3)设置模板DNA、DNA聚合酶、dNTP以及Mg的浓度梯度。
二、AFLP技术
1. 实验目的
学习和掌握AFLP分子标技术的原理、操作方法和实验注意事项,了解AFLP分子标记技术在分子辅助育种中的应用。
2
2. 实验原理
基因组DNA用两种限制性内切酶进行双酶切,形成分子量大小不等的限制性酶切片段,然后把酶切片段与有共同粘性末端的人工接头连接,连接后的粘性末端序列和接头序列作为PCR反应引物的结合位点,通过PCR反应对酶切片段进行预扩增和选择性扩增。由于限制性片段太多,全部扩增则产物难以在胶上分开,为此在引物的3’端加入1-3个选择性碱基,这样只有那些能与选择性碱基配对的片段才能与引物结合,成为模板被扩增,从而达到对限制性片段进行选择扩增的目的;最后通过聚丙烯酰胺凝胶电泳,将这些特异性的扩增产物分离开来。 3. 仪器设备
离心机,培养箱,微量移液器,制冰机,离心机,PCR仪。
4. 实验试剂:
MseI,EcoRI,10Х酶切缓冲液,MseI接头,EcoRI接头,T4-连接酶,MseI引物,EcoRI引物,dNTP,10Х PCR缓冲液,DNA聚合酶。MseI引物II,EcoRI引物II,dNTP,无菌去离子水。 5. 实验方法
(1)接头的设计
AFLP接头是双链的寡核苷酸,其设计遵循随机引物的设计原则,可采用primer premier 5.0软件设计。人工接头5?端去磷酸化,这样接头只有一端可以被连接到酶切片段的末端。
AFLP接头一般由二部分组成:即核心序列和限制性内切酶识别序列。通常采用EcoRI和MseI两个限制性内切酶进行酶切操作,设计的EcoRI接头和MseI接头如下
表
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所示。
CTCGTAGACTGCGTACC EcoRI-接头 5’-
5’ CATCTGACGCATGG TTAA-
GACGATGAGTCCTGAG 5’- MseI-接头
5’ TACTCAGGACTC AT- AFLP接头构成示意图
(2)引物的设计
AFLP引物的设计主要由接头的设计决定,其长度一般为16-20个碱基,AFLP引物的5?端是与接头序列相对应的。AFLP引物的一个重要特征是所有引物起始于5?-G残基。值得注意的是,无论
65?端是何种碱基,dNTP浓度过低时容易产生双链结构。3?端选择性碱基一般不超过3个*,当引物带有1-2个选择性碱基时,引物的选择较好;当选择性碱基增加到3个时,引物的选择特异性仍可接受;当引物的选择性碱基增加到4个时,引物与模板的错配率增加,扩增特异性下降,会出现原
n指纹图谱中未出现的条带。对于双酶切反应而言,引物组合数共有(2)种,n为选择碱基的数目。
引物主要由3部分组成即5?端核心序列、酶切位点序列、3?端选择性延伸序列(以EcoRI引物和MseI引物为例,下同)。
3
AFLP接头构成
引物名称 5?端核心序列 酶切位点序列 选择性延伸序列
EcoRI引物 5-GACTGCGTACC AATTC NNN-3
MseI引物 5-GATGAGTCCTGAG TAA NNN-3 (3)基因组DNA酶切
为了便于灵活的调节扩增片段的大小,一般采用两种限制性内切酶消化基因组DNA。一种是切点少的内切酶,如具有6碱基识别位点的EcoRI,它产生较大的DNA片段;一种是切点多的内切酶,如具有4碱基识别位点的MseI,它产生较小的DNA片段。由EcoRI和MseI酶切产生三种基因组片断,MseI-MseI片段,EcoRI-EcoRI片段,EcoRI-MseI,其中EcoRI-MseI为主要酶切产物。 ? 将200 µL离心管、模板DNA、MseI、EcoRI、10 × buffer、无菌去离子水置于冰上溶解。
? 依次向无菌的200 µL离心管中加入各成份,加水至终体积为20 µL。轻轻混匀,离心去除气泡。
组分 DNA模板 Mse I EcoR I 10 × Buffer
用量 100 ng 2 U 2 U 2 µL
?37 ?恒温培养箱酶切2-4 hr。
(4)接头的连接
将MseI接头、EcoRI接头、T4-连接酶和无菌去离子水置于冰上溶解。依次向无菌的200 µL离心管中加入如下成份,加水至终体积为20 µL。轻轻混匀,离心去除气泡。
组分 酶切液 EcoR I接头 Mse I接头 T4-连接酶
用量 10 µL 50 pmol 50 pmol 6 U
37 ?恒温连接16 hr。
(5)DNA样品的预扩增
DNA样品预扩增是为了充分利用连接产物,同时获得较多扩增产物,为进一步筛选扩增引物提供保障。预扩增引物在设计时选择性碱基通常为一个。
? 将MseI引物I、EcoRI引物I、10 × PCR缓冲液、dNTP、DNA聚合酶和无菌去离子水置于冰上
溶解。
? 依次向无菌的200 µL离心管中加入如下成份,加水至终体积为50 µL。轻轻混匀,离心去除气泡。
4
连接后样品 5 µL
引物(各) 10 ng
dNTP 10 nmol
PCR缓冲液 1Х
DNA聚合酶 2.5 U
? 按照如下程序进行PCR反应。
94 ? 2-5 min
94 ? 30 sec
56 ? 60sec 35循环 72 ? 60 sec
72 ? 7 min
4 ? ?
? 琼脂糖凝胶电泳检测:取20 µL预扩增产物和5 µL上样缓冲液混合后在0.8 %琼脂糖凝胶中检测
预扩增的效果,样品用0.1Х TE稀释20倍,-20 ?保存。 (6)DNA样品的扩增
预扩增产物需稀释到一定倍数才能进行选择性扩增,否则会产生类似“smear”的现象,具体的稀
释倍数视预扩增结果而定。
? 将10 × PCR缓冲液、MseI引物II、EcoRI引物II、dNTP、DNA聚合酶和无菌去离子水置于冰上
溶解。
? 依次向无菌的200 µL离心管中加入如下成份,加水至终体积为20 µL。轻轻混匀,离心去除气泡。
稀释的预扩增产物 5 µL
引物 各25 ng
dNTP 4 nmol
PCR缓冲液 1Х
DNA聚合酶 1 U
? 按照如下反应条件进行PCR反应。
94 ? 2 min
94 ? 30 sec
12循环,退火温度65 ? 30 sec 每循环降低0.7 ?
72 ? 60 sec
94 ? 30 sec
56 ? 30 sec 23循环
72 ? 60 sec
5
4 ? ?
? 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测扩增结果。
6. 注意事项
(1)基因组DNA应具有较好的纯度。
(2)内切酶的选择应慎重。
(3)要确定适宜的酶切时间,酶切时间太长浪费时间,酶切时间太短则PCR产物大片段较多、带
型密集、不易分辨。必须保证基因组DNA酶切完全,否则会影响最终实验结果。 (4)制作聚丙烯酰胺凝胶时,胶平板应格外清洁,否则残留去污剂会导致银染时产生褐色背景或在
灌胶时产生气泡。从而影响DNA分子条带的形状(如使条带成锯齿形)与迁移方向。 (5)进行聚丙烯酰胺凝胶电泳时,注意样品要变性完全。如若样品变性不充分,样品孔内会有很深
的条带。电泳前必须完全冲洗干净点样孔中的尿素和未聚合的丙烯酞胺。如孔中残留有尿素,跑
出的条带会发虚,丙烯酞胺的残留则会使带弯曲。
7. 作业
(1)AFLP接头的组成。设计接头时应考虑哪些因素?
(2)选择内切酶要考虑哪些问题,
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7