[原创]蔗糖合成酶的测定方法
蔗糖合成酶的测定方法
一、仪器设备
冷冻离心机、恒温水浴、分光光度计
二、试剂
HEPES-NaOH(50mmol/L,pH7.5)缓冲液,包括50mmol/L MgCI;2mmol/LEDTA;2
0.2%(W/V)BSA;2%PVP;
0.1%间苯二酚:称取0.1g溶解并定溶于100ml 95%乙醇中。 30%盐酸、2mol/L NaOH、100mmol/L UDPG、100mmol/L6-磷酸果糖、100mmol/L果糖
三、操作方法
1、粗酶液制备
称取0.5g样品(植物叶片去掉主叶脉),洗净剪碎,置于预冷的研钵中,加3ml Hepes-NaOH缓冲液,冰浴研磨,10000×g离心10min。
2、酶活性测定
依次加入 50μL粗酶液,
50μLHepes-NaOH缓冲液pH7.5,
20μL 50 mmol/LMgCI, 2
20μL 100mmol/L UDPG,
20μL 100mmol/L6-磷酸果糖(20μL 100mmol/L果糖), 30?中反应30min后,加入200μL 2mol/L NaOH终止反应,沸水煮10min,流水冷却,加入1.5ml 30%盐酸和0.5ml 0.1% 间苯二酚,摇匀后置于80?水浴保温10min,冷却后置于480nm处,以提前杀死酶活性为空白比色测定蔗糖含量。 同时取50μL粗酶液,加入200μL 2mol/L NaOH,以下同上操作,测定蔗糖含量。
3、蔗糖标线制作:
取0、40、80、120、160、200μg/ml的蔗糖溶液50μL,操作同上,然后以蔗糖浓度为纵坐标,以吸光值为横坐标,得方程。
4、计算
,1,1样品中酶活性(μg?g?h)=
式中 C—反应液催化产生的蔗糖总量(μg);
V—提取酶液时加入的缓冲液体积(ml); 1
V—酶反应时加入的粗酶液体积(ml) 2
淀粉酶活性的测定
1方法
1.1试剂配制淀粉酶提取缓冲液:0.1mol/L-1柠檬酸溶液(pH 5.6);1%的淀粉溶液:用0.1mol/L-1的柠檬酸缓冲液(pH 5.6)配制;
标准
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麦芽糖溶液(1mg/mL-1);3,5-二硝基水杨酸试剂(DNS试剂):称取6.5 g 3,5-二硝基水杨酸溶于少量水中,移入1000 mL容量瓶中,加入325 mL 2mol?L-1 NaOH溶液,再加入45g丙三醇,摇匀,冷却后定容到1000 mL。淀粉和麦芽糖为Sigma产品,其余试剂为国产
分析
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纯试剂。
1.2测定方法
1.2.1酶液的提取
将每一个重复的3个果实去皮后切碎混匀,称取其果肉1g,置于预冷的研钵中,加2mL
-1预冷的0.1mol/L柠檬酸溶液(pH5.6)和少量石英砂研磨,将匀浆移入7mL的离心管中,再分别用1mL的0.1mol/L-1柠檬酸缓冲(pH 5.6)冲洗2次,于4?下以15000×g离心15min,上清液转移入另一个5mL离心管中,作为酶提取液备用。
1.2.2酶活性的测定
取洁净的试管18支,作标记,每一个样品设1个对照。总反应体积为0.5mL,测定管含0.2mL的酶提取液和0.3mL的1%淀粉溶液;对照管含0.2 mL的酶提取液和0.3mL的0.1mol/L-1柠檬酸溶液(pH 5.6,不含底物淀粉)将试管放入恒温40?的水浴锅中,保温30min后取出,立即加入1.5mL的DNS试剂终止反应再将试管置于沸水浴中10min,取出后冰浴冷却。取反应液稀释10倍,测定波长520nm处的吸光值,同上做麦芽糖标准曲线,从标准曲线上查出麦芽糖的含量,计算淀粉酶的总活性。
周蓓云.α-和β-淀粉酶活性的测定.见:中国科学院上海植物生理研究所,上海市植物生理学会编.现代植物生理学实验指南.北京:科学出版社,1999.123~124
酸性转化酶活性的测定
1.酶的制备和活性测定
酶的制备参照Miron&schaffer(199l)以及王永章等(2。02)的方法,稍做修改。提取缓冲液为:150mmol/lTris一Hcl(pH8.0),10mmol/lMgC1,10mmol/l抗坏血酸,2mmol/LEDTA2
一Na,lmmol/LBenzadine(苯甲脒),0.1mmol/LPMSF和0.2%(v/v)ß一疏基乙醇,视发育阶段不同加入3%(w/,)PvPP。称取一定量的果肉,加入2-3倍体积冷的提取缓冲液,于高速匀浆器中快速破碎组织至匀浆,16000*g离心20min,上清液对稀释10倍的提取缓冲液(不含PvPP)透析20h,其间更换透析液3次。经透析的上清液用于可溶性酸性转化酶活性和数量的测定。离
心得
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到的沉淀物用一定体积的提取缓冲液(不含PVPP)洗涤3遍,离心去上清液,沉淀用2~3倍体积的含0.5mol/LNaCI的提取缓冲液充分悬浮后,低温(4?)下振荡浸提24h,16000*g离心20min,上清液透析后用于细胞壁酸性转化酶活性和数量的测定。透析方法同上。
可溶性酸性转化酶和细胞壁转化酶活性的测定参照Miron&Schaffer(1991)的方法,测定反应液为0.1mol/L乙酸一乙酸钠缓冲液(pH4.8),0.1mol/L蔗糖。用3,5一二硝基水杨酸测定其生成还原糖的量。
蔗糖合成酶的测定方法
蔗糖是重要的光合产物,为植物体内运输的主要物质,又是碳水化合物的暂贮形式之一。蔗糖合成酶(SS)、(SPS)是植物体内催化其合成的两种酶。这两种酶在生物体内的功能有所不同。蔗糖合成酶(SS)以游离果糖为受体,蔗糖磷酸合成酶(SPS)以果糖-6-磷酸为受体。后者形成的蔗糖磷酸,在蔗糖磷酸合成酶的作用下形成蔗糖。一般把蔗糖磷酸酯合成酶-蔗糖磷酸酶系统看作是蔗糖合成的主要途径,而把蔗糖合成酶看作是蔗糖分解或形成核苷酸葡萄糖的系统。UDPG是合成蔗糖的葡萄糖供体,故催化UDPG合成的UDPG焦磷酸化酶活力的高低与蔗糖合成的速率有十分密切的关系。 蔗糖的合成(二条途径):
1、蔗糖合成酶 (非光合组织)UDPG+果糖 ?蔗糖+UDP 2、磷酸蔗糖合成酶(光合组织)UDPG+F-6-P ? 磷酸蔗糖+UDP 磷酸蔗糖+H2O? 蔗糖+Pi
一、仪器设备
冷冻离心机、恒温水浴、分光光度计
二、试剂
HEPES-NaOH(50mmol/L,pH7.5)缓冲液,包括50mmol/L MgCI;2mmol/LEDTA;2
0.2%(W/V)BSA;2%PVP;
0.1%间苯二酚:称取0.1g溶解并定溶于100ml 95%乙醇中。 30%盐酸、2mol/L NaOH、100mmol/L UDPG、100mmol/L6-磷酸果糖、100mmol/L果糖
三、操作方法
1、粗酶液制备
称取0.5g样品(植物叶片去掉主叶脉),洗净剪碎,置于预冷的研钵中,加3ml Hepes-NaOH缓冲液,冰浴研磨,10000×g离心10min。
2、酶活性测定
依次加入 50μL粗酶液,
50μLHepes-NaOH缓冲液pH7.5,
20μL 50 mmol/LMgCI, 2
20μL 100mmol/L UDPG,
20μL 100mmol/L6-磷酸果糖(20μL 100mmol/L果糖), 30?中反应30min后,加入200μL 2mol/L NaOH终止反应,沸水煮10min,流水冷却,加入1.5ml 30%盐酸和0.5ml 0.1% 间苯二酚,摇匀后置于80?水浴保温10min,冷却后置于480nm处,以提前杀死酶活性为空白比色测定蔗糖含量。 同时取50μL粗酶液,加入200μL 2mol/L NaOH,以下同上操作,测定蔗糖含量。
3、蔗糖标线制作:
取0、40、80、120、160、200μg/ml的蔗糖溶液50μL,操作同上,然后以蔗糖浓度为纵坐标,以吸光值为横坐标,得方程。
4、计算 ,1,1样品中酶活性(μg?g?h)=
式中 C—反应液催化产生的蔗糖总量(μg);
V—提取酶液时加入的缓冲液体积(ml); 1
V—酶反应时加入的粗酶液体积(ml) 2