酵母转化
(一) 材料、仪器设备及试剂:
1. 0.2% stock solution 的 L-Adenine Hemisulphate:0.2g+100ml的ddH20,分2支 用时灭菌。
2.YPDA培养基: 1L
● 胰蛋白胨 20g/L
● 酵母提取物 10g/L
● 葡萄糖 20g/L
● 腺嘌呤 15ml 0.2% stock solution
● 调节pH =7.5,121°灭菌15min
3.YPDA培养基 (用时再分装灭菌)YPDA Liquid (1 L)
Reagent
Amount
YPD
50 g
L-Adenine Hemisulphate
15 ml of 0.2% stock solution
Deionized water
Up to 1 L
Adjust pH to 6.5 if necessary, then autoclave.
3. YPDA Agar培养板(1 L)
Reagent
Amount
YPD agar
70 g
L-adenine hemisulphate
15 ml of 0.2% stock solution
Deionized water
Up to 1 L
Adjust pH to 6.5 if necessary, then autoclave.
4.0.9%NaCl(w/v)(科室拿) 1ml:EP管分装
NaCl: 0.9g
milipore水 定容到100ml
灭菌121°,20min
5.100%DMSO 从试剂瓶中分装到ep管中,500ul每管,室温保存
6. 10×TE(pH=7.5): (0.1M Tris-HCl,10mM EDTA)
● Tris-HCl 1.211g/100ml
● EDTA 0.37g/100ml
● 调节pH=7.5, 121°,20min
7. 10×LiAc(pH=7.5)
● 1M LiAc 10.202g/100ml
● 用醋酸调节pH=7.5,121°灭菌20min
1. 1.1×TE/LiAc
1.1ml的10×TE + 1.1ml的 10×LiAc 加入灭菌水终为10ml
2. 50% PEG3350:
● PEG3350: 50g
● 已灭菌的milipore水: 定容到100m
● (可用50°水浴助溶,PEG易吸水,不可灭菌)
3. PEG/LiAc:现配现用,在超净台中操作,吸取母液到ep管或50ml离心管中
终浓度 10ml
PEG3350 40% 8ml 50%PEG3350
TE buffer 1× 1ml 10×TE
LiAc 1× 1ml 10×LiAc
4. 变性的鲱鱼精DNA(10mg/ml): 100° 5min 变性
5. milipore水,70%酒精棉球,50ml离心管4个,ep管一盒,15ml试管架,50ml试管架,ep管架
6..x-a-GAL用 DMF(dimethyl formamide) 20mg/ml,
Prepare and autoclave 1 L of the appropriate droput agar medium
Cool to 55°C Add 2 ml of X-a-Gal (20 mg/ml)
Spreading onto premade agar plates
Dilute X-a-Gal to 4 mg/ml in dimethyl formamide
Spread 200 μl onto 15 cm plates, or 100 μl onto 10 cm plates using sterile glass beads
(二) 具体方法:
Freezing Medium consists of YPD liquid medium + 25% glycerol
◆ A:酵母感受态制备
1. 从平板上或保种管中,挑少许酵母,在YPDA平板上划单克隆(10ul+10ul的DDH20),30°培养3天左右。
2. 从平板上分别挑取单克隆(直径2-3mm)到含有3ml YPDA的玻璃试管中(平行做3管)
3. 30°,200rpm,培养8-12h (过夜)
4. 取200ul 菌液,测OD600
5. 选取OD600值最大的一个试管(即活力最高的一个),吸取5ul转移至50m新鲜的YPDA培养基中(培养基装在250ml三角瓶中) ???剩下的离心制作甘油菌
6. 30°,200rpm,培养16-20h,直至OD600=0.15-0.3
7. 将培养好的菌液转入2个50ml离心管,室温离心3000g,3min,弃上清,用100ml新鲜的YPDA悬起管底的菌体,并倒入干净的三角瓶中。
8. 30°,200rpm培养直到OD600=0.4-0.5(3-5小时)
9. 将菌液倒入2个50ml离心管,室温离心,3000g,3min,弃上清,每个离心管用30ml 灭菌水重悬。
10. 再次离心,3000g,3min,室温 弃上清,每管用1.5ml 1.1×TE/LiAc重悬。
11. 将重悬的菌液转移到2个ep管中,12000rpm,15s
12. 弃上清,每管用600ul 1.1×TE/LiAc重悬,将两管重悬菌液并入一管,准备进行转化。
◆ B:酵母质粒转化 (pGBKT7。pGBKT7/n端和c端。)
小规模转化 大规模转化
1. 加入质粒DNA (在预冷的EP管中) 100-500ng 3-5ug
鲑鱼精DNA(变性的,10mg/ml) 5ul 20ul
加入感受态细胞, 轻弹混匀 50ul 600ul
2. 加入PEG/LiAc, 轻弹混匀 500ul 2.5ml
3. 30°水浴,每10-15min轻弹混匀 30min 45min
4. 加入DMSO, 轻弹混匀 20ul 160ul
5. 42°水浴,每5-10min轻弹混匀 15min 20min
6. 离心,弃上清 最大转速 3000g
15s 3min
7. 用液体YPDA培养基重悬 1ml 3ml
8. 30°,230rpm,培养 90min 90min
9. 离心,弃上清 最大转速 3000g
15s 3min
10. 用0.9%NaCl重悬 1ml 15ml
11. 涂板在相应的筛选培养基上。
(三) 注意事项:
1. 转化效率与很多因素有关,酵母活力是一个重要因素,一般制备酵母感受态的细胞必须是没有经过4°保存的,活化过的,从培养箱中取出的新鲜酵母。
2. 在制备酵母感受态时,不要超过上述的的OD值,要让酵母一直处在生长最旺盛的时期,特别是最后一次培养,OD600的值不要超过0.5
3. 酵母转化过程中,没有抗生素,极易染菌,所有实验都在超净台中进行,超净台需提前一天用70%酒精棉擦拭,将第二天用到的物品(如,试剂,试管,架子等)都放入超净台,灭菌过夜,每次进入超净台操作时,需用70%酒精棉擦手消毒。
4. 由于酵母生长周期较长,平板一般在培养箱中要放3天左右,所以在倒板时,不可吹得太干,小板晾干10min左右,大板晾干15min左右即可
5. 有些筛选培养基需要加入3-AT,必须是在培养基冷却到55°一下才可加入。
铺板(铺板3个一起做,转化后生长、自我激活、毒性对比)
试剂准备:准备SD/-Trp板3*3=9个板 9*20=180ml~~~200ml
1.appropriate SD selection medium()
For pGBKT7, use SD/-Trp For pGADT7, use SD/-Leu
2. 1/10 稀释:100ul目的载体+900ul YPDA 板3*3=9个板 9*20=180ml~~~200ml
1/100稀释:10ul目的载体+990ul YPDA
1/5稀释: 10ul目的载体+40ul YPDA
二、Spread 100 μl of 1/10 and 1/100 dilution onto a 100 mm plate containing the appropriate SD selection medium
三、Incubate plates upside down at 30°C until colonies appear (3–5 days).
3-5天后,挑取单菌落,5ml的缺陷液体培养基中培养12h(过夜),室温离心,3000g,3min。
甘油菌制备 取500ul的(YPD+25%甘油)
菌落自我激活和毒性
1、自我激活
1) 已准备好的AH109菌株:pGBKT7-cav3和N端,
2) 阳性对照组:pGBKT7-53(AH109菌株) 和pGADT7-T
3) SD/-Trp/ X-a-Gal plates
在1L中,Cool to 55°C,add 2 ml of X-a-Gal (20mg/ml).
4) SD/-Ade/-His/-Trp/X-a-Gal plates
在1L中,Cool to 55°C,add 2 ml of X-a-Gal (20mg/ml)
2、实验过程:
1.Spread 100 μl of a 1/10 dilution and a 1/100 dilution of your transformation mixture onto separate:
SD/-Trp/ X-a-Gal plates
SD/-Ade/-His/-Trp/X-a-Gal plates
2、Expected results after 3–5 days:
毒性-中毒
1.Materials:AH109 competent cells (Section XII.A)
SD/-Trp agar plates (Appendix D)
SD/-Trp liquid medium (Appendix D)
2、Transform 100 ng of the following vectors using the small-scale transformation protocol (Section XII.B)
pGBKT7 (empty)
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