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分子标记技术及其在水稻育种中的应用

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分子标记技术及其在水稻育种中的应用 分子标记技术及其在水稻育种中的应用 魏凤娟, 陈秀晨 (1.安徽农业大学生命科学学院,安徽 合肥 230036;2.安徽省农业科学院情报研究所,安徽 合肥 230031) 摘 要: 综述了分子标记的种类,对几种主要分子标记技术的技术原理、优缺点等方面进行了比较,概括了分子标记技术在水 稻育种中的应用进展。 关键词:分子标记; 水稻育种; 应用 中图分类号:S511;S188 文献标识码:A 文章编号:1004-874X(2010)08-0185-03 作为基因型易于识别的表现形式,遗传标记在植物种 质资源...

分子标记技术及其在水稻育种中的应用
分子标记技术及其在水稻育种中的应用 魏凤娟, 陈秀晨 (1.安徽农业大学生命科学学院,安徽 合肥 230036;2.安徽省农业科学院情报研究所,安徽 合肥 230031) 摘 要: 综述了分子标记的种类,对几种主要分子标记技术的技术原理、优缺点等方面进行了比较,概括了分子标记技术在水 稻育种中的应用进展。 关键词:分子标记; 水稻育种; 应用 中图分类号:S511;S188 文献标识码:A 文章编号:1004-874X(2010)08-0185-03 作为基因型易于识别的表现形式,遗传标记在植物种 质资源研究和育种工作中有着十分重要的地位。遗传标记 指在遗传分析上用作标记的基因,也称为标记基因,主要 包括形态学标记、细胞学标记、生化标记和分子标记等 [1]。 形态标记指植物的外部特征;细胞标记主要是指染色体的 核型和带型包括染色体数目、大小和着丝点位置等;生化 标记主要包括同工酶和等位酶标记。这 3种标记都是基因 表达的结果,其多态性差,标记数量有限,易受环境因素影 响。分子标记技术以核酸为研究对象,能直接在 DNA分子 上检测生物间的差异。 1974年,Grodjicker创立了 RFLP 标记技术,之后基于 Southern杂交或 PCR扩增技术为基础的 DNA分子标记技 术相继被建立并广泛应用于生物遗传育种研究中,且在绘 制水稻遗传图谱、鉴定种质、定位农艺性状标记、克隆基因 定位和 MAS辅助育种等方面都有广泛应用, 极大地推动 了水稻遗传育种工作的进程。 1 分子标记的概念及其特点 分子标记的概念有广义和狭义之分[2]。 广义的分子标 记是指可遗传并可检测的 DNA序列或蛋白质; 狭义分子 标记是指能反映生物个体或种群间基因组中某种差异的 特异性 DNA片段。 每一种标记都有其自身的特点和特定 的应用范围,分子标记与形态标记、细胞标记及生化标记 等遗传标记相比, 具有以下特点:(1) 准确性高。 直接以 DNA的形式表现,植物体的各个组织、各生长发育时期均 可检测,不受季节及环境因素限制,与基因表达与否无关; (2)数量多。 由于基因组 DNA的变异极其丰富,分子标记 数量几乎是无限的;(3)多态性高,自然界存在许多等位变 异,不需专门创造特殊的遗传材料;(4)共显性好。 许多分 子标记都表现为共显性,能更好地鉴别纯合基因与杂合基 因类型;(5)对表型无影响。 不影响目标性状的表达,与不 良性状无必然连锁。 2 几种主要分子标记技术比较 分子标记自从诞生之日起, 一直受到许多学者关注, 在历经短短几十年的迅猛发展后, 分子标记技术日趋成 熟。现有的 DNA分子标记技术有几十种,基于分子杂交技 术的分子标记如限制性长度片段多态性 (RFLP)和数目可 变串联重复多态性(VNTR );基于 PCR 的分子标记主要有 2大类,其中随机引物的 PCR标记主要包括随机扩增多态 性 DNA (RAPD)、任意引物 PCR (AP—PCR)和 DNA 扩增 指纹印迹(DAF),特异性引物的 RCR 标记主要包括序列标 志位点 (STS)、 简单重复序列 (SSR)、 内部简单重复序列 (ISSR)、 序列特异性扩增区 (SCAR)、 单引物扩增反应 (SPAR)、DNA单链构象多态性 (SSCP) 和双脱氧化指纹法 (ddF); 基于限制性酶切和 RCR 技术的分子标记包括扩增 片段长度多态性 (AFLP)和酶切扩增多态性序列 (CAPS); 基于 DNA 芯片技术的分子标记如核苷酸多态性 (SNP)[3]。 目前, 应用较广泛的分子标记技术主要有 RFLP、RAPD、 AFLP、SSR 和 ISSR 等,其主要技术原理、基本操作、优缺 点和应用等见表 1[3-7]。 3 分子标记在水稻育种中的应用 3.1 水稻分子遗传图谱的构建 1988 年,Mccouch 等 [8]构建了第 1 张水稻 RFLP 遗传 图谱, 是以籼稻品种 IR36 和爪哇稻杂交的 F2群体的 53 个植株中检测到等位 RFLP 分离而建立的 。 1994 年 , Causse 等[9]又构建了 1 张含有 726 个 RFLP 分子标记的更 饱和的遗传图谱。陈洪等[10]构建了含有 52个 RAPD标记的 水稻分子标记图谱,总长度为 898.4 cm,标记间平均间距 为 17.3 cm。 熊立仲等[11]用野生稻(Oryza rufipogon Griff)杂 交的 F2和栽培稻品种矮脚南特为群体,构建了含有 612 个 分子标记的水稻遗传图谱,该图谱总长度为 1 973 cm,标 记间平均距离仅为 3.2 cm。 目前,利用 SSR标记已成功地 将水稻耐冷性基因定位于第 4、8 号染色体上,且与分子标 记 RM280、RM337紧密连锁, 水稻隐性香味基因位于第 8 号染色体上,在 SSR 标记 GROI 和 RM233 之间,且与 2 个 标记间的遗传距离分别为 3.3、5.7 cm。 1991年,日本发表 了水稻分子图谱 [12], 并且进展较快, 他们结合 RAPD 和 RFLP 技术构建的图谱含有 RAPD 和 RFLP 标记 1 100 个,平均图距为 1.4 cm[13]。 日本和美国在构建水稻分子图 谱时,积极合作,互相交换探针,将各自的分子图谱整合, 获得了更精细致密的图谱。现有的水稻分子遗传图谱含有 3 267个 RFLP标记,其中 2 600个表达序列标签(ESTs)已被 定位(http://rgp.Dna.aff rc.go.jp/publicatagenetic.map2000/index. html)。 3.2 基因定位及其克隆 收稿日期:2010-01-21 作者简介:魏凤娟(1973-),女,硕士,农艺师,E-mail: weijf1973@ 163.com. 广东农业科学 2010 年第 8 期 185 C M Y K 主要缺点 DNA 需要量大、费 时费力、周期长、技 术复杂、需要同位 素等[4] 重复性差、信 息量少[4] 产生的标记多为 显性、技术复杂、 对 DNA 质量要求 高、需要同位素等[6] 成本高、难度大、 现有的 SSR 标记 数量有限、突变率 高[7] 标记大多为显性 标记、计算杂合度 和父系分析等效 果差 主要优点 多态性不受环境等因素 影响、具有共显性、数量 多、标记范围广[3] 引物短、无种属特异性、 DNA 需要量少、程序简 单、成本低[5] 多态性丰富、标记数量 多、DNA 需要量少、重 复性好、快速、经济简 便、信息含量高[6] 多态性丰富、重复性 好、稳定性强 DNA 需要量少、多态性 丰富、操作简单、可靠性 高、用时少、稳定性高、 呈孟德尔式遗传 基本操作 提取 DNA→限制性内切 酶酶切→单链转移至杂 交膜上→标记探针, 使探 针与杂交膜上的单链 DNA 杂交→放射自显影→显示 DNA 中含有的与探针的序 列同源的限制性片段 提取 DNA→加入随机引物 PCR 扩增→凝胶电泳→观 察、拍照 提取 DNA→限制性内切酶 酶切→连接酶连接限制性片 段两端→PCR 引物与 3'接 头特异性识别→特异性扩增 构建基因组 DNA 文库→筛 选含有 SSR 标记的克隆→ 测序阳性克隆→合成引物→ PCR 扩增→电泳分析多态性 DNA 提取→ISSR 引物筛选→ ISSR-PCR 扩增→凝胶电泳 →观察、拍照 技术原理 利用特定的限制性内切酶识别并 切割不同生物个体的基因组 DNA, 得到大小不等的 DNA 片段,产生 的 DNA 数目和各片段长度反映了 DNA 分子上不同酶切位点的分布情况 利用随机引物(一般为 8~10 bp)通过 PCR 反应非定点扩增 DNA 片段,扩增 片段多态性反映了基因组相应区域的 DNA 多态性 利用限制性内切酶水解基因组 DNA,产 生不同大小的 DNA 片段,再使酶切片段 相连接,作为 模板 个人简介word模板免费下载关于员工迟到处罚通告模板康奈尔office模板下载康奈尔 笔记本 模板 下载软件方案模板免费下载 DNA,然后以人工接头 的互补链为引物预扩增,最后在添加 1~3 个选择性核苷酸为引物,对模板 DNA 基 因进行选择性扩增,通过凝胶电泳分离检 测获得的 DNA 片段,根据不同的扩增片 段长度检测其多态性 个体核心序列或不同品种的重复次数不同, 但此重复序列两侧的 DNA 序列是保守的, 利用与侧连区域互补的引物,通过 PCR 扩 增分析核心序列重复组数的变异性 用锚定的微卫星 DNA 为引物,在 SSR 序列 3'端或 5'端加上 2~4个随机核苷酸,在 PCR 反应中,锚定引物引起特定位点退火,导致与 锚定引物互补的间隔不大的重复序列间 DNA 片段进行 PCR 反应 分子标记 限制性片段 多态性(RFLP) 随机扩增多态 性 DNA(RAPD) 扩增片段长度 多态性(AFLP) 简单重复序列 (SSR) 内部简单重复 序列(ISSR) 表 1 几种主要分子标记的比较 基因定位即确定基因在染色体上的位置及与之相连 锁的分子标记。 目前,由分子标记已经定位了超过 100 个 控制水稻重要性状的基因。 作物许多重要经济性状是由 微效多基因控制的数量性状[14],传统的数量遗传学研究方 法不完善, 如在鉴别单个数量基因以及与之有关的染色 体片段和确定 QTL在染色体上的位置等方面存在较大缺 陷。 DNA分子标记的建立和发展加快了作物 QTL作图及 其定位方法的进程。 在已被定位的基因中,抗病虫的基因 定位最多,尤其是抗稻瘟病和白叶枯病基因。 朱立煌[15]利 用分池法(DNA Pool)在第 8 号染色体上定位了 1 个未知 的稻瘟病基因 , 命名为 Pi-zh, 与分子标记 BP127A, RG28,RG1034 等连锁。 美国学者 WU 等 [16]研究结果表明 Pi-62(t)基因位于水稻第 12 号染色体上,与 RZ816~RG9 的 22 个分子标记连锁, 且与 SP7C3、SP8C6、SP7H8 共分 离。利用 BAC库构建了包含该基因在内的饱和物理图谱; 通过染色体步移技术,对 Pi-62(t)基因进行亚克隆,目前已 获得了与 Pi-62(t)基因紧密连锁的 3个 BAC 克隆;同时定 位于上述区域还有 Pi-ta,Pi-b, 位于第 2 号染色体,与 RFLP标记 C2782B~C97的 22 个分子标记连锁,其他相关 标记分析发现 2 个相互重叠 YAC 克隆 Y3802 和 Y6791 与上述标记相关[17]。 目前,已从水稻品种资源中发现至少 19个抗白叶枯病基因[18],科学家们利用经典遗传学方法对 大多数抗性基因进行了定位: 位于第 4 号染色体上的有 Xa-1、Xa-12、Xa-2、Xa-4; 位于第 5号染色体上的有 Xa- 5、Xa-13;位于第 10 号染色体上的有 Xa-3、Xa-4a(Xa-W, Xa-4b,Xa-6,Xa-a)、Xa-10、Xa-21[19],且 Xa-21 基因被认为 是最有效的抗白叶枯基因。 Ronald 等 [20]对在 123 个 DNA 标记和 985 个随机引物中发现了 RFLP 标记的 RG103 以 及另外 2 个 RAPD 标记的 RAPD818 和 RAPD248 都位于 水稻的第 11 号条染色体上,且这 3 个标记与 Xa-21 基因 紧密连锁。此外,其他已定位的基因主要还包括恢复基因、 广亲和基因、高秆隐性基因、显性核不育基因和光敏雄性 核不育基因等。 3.3 种质资源的保存和遗传多样性分析 我国稻作历史悠久,稻区分布辽阔,经过长期自然 与人工选择已经形成丰富的稻种资源。但要长期保存这 些遗传资源其费用昂贵,随着相关资料的积累,鉴定并 淘汰重复资源、筛选数量少而保存多的遗传变异成为当 务之急。 利用 DNA 分子标记对物种间在 DNA 水平上的 多态性资料进行统计分析, 可以确定其核心种质资源、 了解其同源程度,以便能够用最少的种质资源而最大限 度地代表其遗传多样性。 赵勇等 [21]利用 16 对 SSR 引物 研究了来自不同国家的 23 份水稻种质资源的遗传多样 性, 结果表明水稻功能基因 SSR 标记能够有效地分析 水稻资源分类、地理分布、生态类型及系谱图谱等。 华 蕾等 [22]用 40 个 SSR 标记比较分析了 151 份我国常规稻 186 C M Y K 的遗传差异, 发现 39 个标记具有多态性, 且共检测到 213 个等位基因,每个位点为 2~11 个,平均 5.5 个,研究 还表明近 10 年来我国常规稻主栽品种丢失了一部分等 位基因, 水稻育种仍需加强对更广泛的种质亲本的选 择。 敖光辉等(2008)用 321 对 SSR 引物筛选 18 份籼粳 稻亚种多态性,筛选到 168 对引物具有明显的标记且多 态性较好。 3.4 分子辅助育种 在作物遗传育种中, 利用分子标记进行辅助选择 (MAS)可以提高选择的准确率与育种效率。近年来,利用分 子标记辅助水稻育种已取得重大进展, 尤其是关于抗稻 瘟病的研究则更多, 且关于抗病性基因方面的分子标记 辅助选择准确率较高。 郑康乐等[23]报道,国际水稻所利用 分子标记辅助选择方法成功地获得聚合了 3 个抗白叶枯 病基因和 3个抗稻瘟病基因的株系。陈红旗等[24]将分子标 记辅助选择方法与特异稻瘟病菌株接种鉴定和农艺性状 筛选相结合, 将 3 个抗稻瘟病基因 Pi-1、Pi-2 和 Pi-3 导 入保持系金 23B, 结果表明其对稻瘟病的抗病频率为 96.7%。彭琴等(2008)高结实率多倍体水稻杂种 F2代分子 标记的分离分析结果表明,水稻植株的杂合度越高,平均 结实率就越高。 4 展望 分子标记技术是分子生物学的重要组成部分。 随着 分子生物学理论和技术的不断更新与完善, 必将有更多 分析速度更快、成本更低、信息更大、稳定性更高的分子标 记被开发。 分子标记技术已被广泛用于作物育种,并取得 了较大成效, 但由于每种分子标记技术都有自身的优缺 点, 在各自特定的领域中均有不可替代的作用。 因此,需 要各种分子标记技术相互融合、 相互渗透才能更好地运 用于实际育种工作中。 参考文献: [1] Lvan hintum T J. 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