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SNT 2833-2011 委内瑞拉马脑脊髓炎检疫技术规范

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SNT 2833-2011 委内瑞拉马脑脊髓炎检疫技术规范 书书书 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛犖/犜2833—2011 委内瑞拉马脑脊髓炎检疫技术规范 犙狌犪狉犪狀狋犻狀犲狆狉狅狋狅犮狅犾犳狅狉狏犲狀犲狕狌犲犾犪狀犲狇狌犻狀犲犲狀犮犲狆犺犪犾犻狋犻狊 20110225发布 20110701实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局 发 布 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 书书书 前  言   本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。 本标准修改采用了世界动物卫生组织公布的《陆生动物手册》(2009年...

SNT 2833-2011 委内瑞拉马脑脊髓炎检疫技术规范
书书书 中华人民共和国出入境检验检疫行业 标准 excel标准偏差excel标准偏差函数exl标准差函数国标检验抽样标准表免费下载红头文件格式标准下载 犛犖/犜2833—2011 委内瑞拉马脑脊髓炎检疫技术规范 犙狌犪狉犪狀狋犻狀犲狆狉狅狋狅犮狅犾犳狅狉狏犲狀犲狕狌犲犾犪狀犲狇狌犻狀犲犲狀犮犲狆犺犪犾犻狋犻狊 20110225发布 20110701实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局 发 布 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 书书书 前  言   本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。 本标准修改采用了世界动物卫生组织公布的《陆生动物 手册 华为质量管理手册 下载焊接手册下载团建手册下载团建手册下载ld手册下载 》(2009年版)第2.5.14章“委内瑞拉 马脑脊髓炎”。除编辑性修改外,主要技术变化如下: ———细化了间接免疫荧光分型试验方法; ———增加了血凝试验内容; ———修改了IgM捕获ELISA的底物作用时间为30min~35min; ———删除了补体结合试验。 本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。 本标准起草单位:中华人民共和国重庆出入境检验检疫局、重庆市进出口食品安全工程技术研究中 心、中华人民共和国山东出入境检验检疫局。 本标准主要起草人:王昱、肖进文、李应国、聂福平、刘生峰、王国民、李贤良、朱来华、周启明。 Ⅰ 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 委内瑞拉马脑脊髓炎检疫技术规范 1 范围 本标准 规定 关于下班后关闭电源的规定党章中关于入党时间的规定公务员考核规定下载规定办法文件下载宁波关于闷顶的规定 了委内瑞拉马脑脊髓炎的病毒分离、间接免疫荧光分型试验、血凝抑制试验、IgM 捕获 ELISA和蚀斑减数中和试验的技术要求。 本标准适用于进出境动物的委内瑞拉马脑脊髓炎检疫。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件。凡是不注明日期的引用文件,其最新版本(包括所用的修改单)适用于本文件。 GB/T18088 出入境动物检疫采样 3 缩略语 下列缩略语适用于本文件。 VEE(venezuelanequineencephalitis):委内瑞拉马脑脊髓炎 EEE(easternequineencephalitis):东方型马脑脊髓炎 WEE(westernequineencephalitis):西方型马脑脊髓炎 RK13细胞系(rabbitkidney13cellline):兔肾细胞系 Vero细胞系(africangreenmonkeykidneycellline):非洲绿猴肾细胞系 4 生物安全要求 本标准的病毒分离、间接免疫荧光分型试验和蚀斑减数中和试验,均需要在生物安全Ⅲ级以上的实 验室进行。人员需提前进行VEE疫苗免疫,蚀斑减数中和抗体滴度在1∶20以上。 5 样品采集 5.1 试剂和 材料 关于××同志的政审材料调查表环保先进个人材料国家普通话测试材料农民专业合作社注销四查四问剖析材料 采血针、离心管、样品瓶、手术镊子、开颅钳、断骨刀、手术剪刀、样品缓冲液(配制见A.1.3)、柠檬酸 钠抗凝剂(配制见A.1.4)。 5.2 采样数量和类型 采样的数量按照GB/T18088的要求执行。样品类型包括:全血、血清、脑脊液、组织[脑和(或) 脊髓]。 1 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 5.3 采集方法 5.3.1 血液样品 无菌采集10mL~15mL全血,立即转至含柠檬酸钠抗凝剂(终浓度为10%)的离心管中,低温 运送。 5.3.2 血清样品 每头动物采集全血10mL~15mL,提取血清3mL以上,低温运送到实验室。 5.3.3 脑脊液样品 无菌采集脑脊液1mL以上,立即低温运送到实验室。 5.3.4 组织样品 无菌采取动物的脑、脊髓,存放于无菌样品瓶,低温48h内运送到实验室。如果48h内无法运送 到实验室,则需干冰冷冻运送。 6 病原分离鉴定 6.1 病毒分离 6.1.1 设备和器材 低温冰箱、超低温冰箱、二氧化碳培养箱、冷冻离心机(≥3000犵)、生物安全柜(ClassⅡ以上)、倒置 光学显微镜、细胞瓶、注射器、移液器(1.0mL~10mL)及配套枪头。 6.1.2 试剂和材料 6.1.2.1 RK13和(或)Vero细胞。 6.1.2.2 MEM培养基。 6.1.2.3 3日龄~5日龄乳鼠。 6.1.2.4 6日龄~8日龄SPF鸡胚。 6.1.2.5 胎牛血清(无BVDV抗体及其他牛病抗体)。 6.1.2.6 样品缓冲液,配制见A.1.3。 6.1.2.7 细胞生长液和维持液,配制见A.2.1。 6.1.2.8 ATV缓冲液,配制见A.2.2。 6.1.3 操作方法 6.1.3.1 样品制备 组织样品低温均质后,加入样品缓冲液制成10%悬液,1500犵,4℃离心20min。取上清液过滤除 菌,置冰盒备用。血清、脑脊液直接使用。 6.1.3.2 细胞分离试验 用适量ATV缓冲液,将培养的RK13细胞和(或)Vero细胞传代。待细胞长至80%~100%,每瓶 细胞按10%体积加入样品悬液,37℃感作1h~2h后加入细胞维持液,37℃培养6d~8d,逐日观察 2 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 细胞病变。每份样品接种RK13和(或)Vero细胞各2瓶,同时设定正常培养细胞对照。若第一代培 养中无细胞病变,则将细胞反复冻融3次,合并两瓶细胞培养物上清液,取适量上清液感染新的单层细 胞;将出现70%~90%细胞病变的细胞培养物反复冻融后,取上清液进行间接免疫荧光分型试验鉴定。 6.1.3.3 鸡胚分离 每份样品接种2枚~4枚6日龄~8日龄SPF鸡胚卵黄囊,每枚0.5mL,孵化7d。弃24h内死亡 鸡胚,收集24h后死亡的鸡胚,用间接免疫荧光分型试验鉴定。若第一代鸡胚无死亡,再盲传一代。 6.1.4 结果判定 6.1.4.1 细胞分离试验 细胞对照无任何细胞病变,细胞生长良好,试验成立。若被检样品连传两代均无细胞病变则判定为 阴性;若出现圆缩、脱落等细胞病变,进一步进行间接免疫荧光分型试验。 6.1.4.2 鸡胚分离试验 若连传两代,均无鸡胚死亡,判定为阴性;若出现鸡胚死亡,进一步进行间接免疫荧光分型试验。 6.2 间接免疫荧光分型试验 6.2.1 设备和器材 生物安全柜(ClassⅡ以上)、二氧化碳培养箱(37℃±2℃)、超低温冰箱、荧光显微镜、Leighton试 管和移液器等。 6.2.2 试剂和材料 6.2.2.1 丙酮(-70℃预冷)。 6.2.2.2 Vero细胞。 6.2.2.3 MEM培养基。 6.2.2.4 VEEV病毒储液。 6.2.2.5 胎牛血清(无BVDV及其他牛病病毒抗体)。 6.2.2.6 正常小鼠腹水,用无菌PBS稀释到1∶160。 6.2.2.7 多价VEE抗体,由指定单位提供。 6.2.2.8 FITC标记的抗小鼠抗体,使用商品 说明 关于失联党员情况说明岗位说明总经理岗位说明书会计岗位说明书行政主管岗位说明书 书推荐的稀释度或预试验确定。 6.2.2.9 VEE单克隆抗体:1A3A5(1AB,1C特异性);1A1B9(1D,1E,1F特异性);1A6C3 (1AB特异性);3B4C4(1AB,1C,1D特异性)。 6.2.2.10 细胞生长液和细胞维持液,配制见A.2.1。 6.2.2.11 ATV缓冲液,配制见A.2.2。 6.2.2.12 PBS溶液,配制见A.3.1。 6.2.2.13 封固溶液,配制见A.3.2。 6.2.3 操作步骤 6.2.3.1 细胞准备 试验前1d~2d,将Vero细胞用ATV缓冲液消化传代到Leighton试管,37℃、5%二氧化碳培 养。待细胞长至80%~100%,移去管内的培养液,换成细胞维持液。对于每一个分离株的鉴定,需准 3 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 备36支Leighton试管。 6.2.3.2 固定和预染色 6.2.3.2.1 用无血清 MEM培养基将分离株从10-2到10-5梯度稀释。每个梯度样品接种6支~8支 Leighton试管,0.1mL/管。取6支作正常细胞对照,用MEM(1×,pH7.2)稀释各种亚型的VEE病毒 储液到100TCID50~1000TCID50后,接种Leighton试管作阳性对照。37℃、5%二氧化碳培养18h 后,从每个稀释度各取1块玻片用丙酮固定,5min~10min。 6.2.3.2.2 用多价VEE抗体做一抗,37℃湿盒孵育25min~45min。PBS润洗一次后,在新鲜PBS 中浸泡5min~10min,双蒸水中润洗一次,置于玻片架上,细胞面向上。 6.2.3.2.3 用FITC标记的抗小鼠抗体做二抗,37℃湿盒中孵育25min~45min。同前洗涤,空气中 干燥,用荧光显微镜观察结果。若病毒生长量不足,再培养4h~6h或更长。确定出最佳感染效果后, 将余下的坡片固定备用。固定好的玻片置于密闭的盒子中,-70℃保存备用。 6.2.3.2.4 组织冰冻切片(8μm),丙酮固定5min~10min;组织涂片空气中干燥30min,丙酮固定。 将固定好的片子密闭保存于-70℃备用。 6.2.3.3 染色 用VEE多价抗体、1A3A5,1A1B9,1A6C3,3B4C4和正常小鼠腹水做一抗,FITC标记抗小鼠抗 体做二抗,进行IFA染色,方法同6.2.3.2.2和6.2.3.2.3。同时对阳性对照和正常细胞对照进行 染色。 6.2.4 结果判定 若阳性对照出现特异性荧光,正常细胞对照无任何特异性荧光,且正常小鼠腹水做一抗的玻片无特 异性荧光,则试验成立。将待检样品获得的试验结果和IFA分型鉴定表(见表1)进行比较,确定感染的 类型。 表1 犐犉犃分型鉴定表 亚型 VEE多价抗体 1A3A5 1A1B9 1A6C3 3B4C4 正常小鼠腹水 1AB + + - + + - 1C + + - - + - 1D + - + - + - 1E,1F + - + - - - 正常培养细胞 - - - - - -   注:“+”代表有荧光,用“-”代表无荧光。 7 血清学检测 7.1 血凝抑制试验 7.1.1 设备和器材 U型血凝板、冷冻离心机(≥3000犵)、温箱(37℃±2℃)、移液器(8孔道和单孔道)及配套枪头。 4 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 7.1.2 试剂和材料 7.1.2.1 阳性血清(指定单拉提供)。 7.1.2.2 阴性血清(指定单位提供)。 7.1.2.3 抗原(指定单位提供)。 7.1.2.4 25%白陶土溶液(用硼酸盐缓冲液配制)。 7.1.2.5 硼酸盐缓冲液(pH9.0),配制见A.4.1。 7.1.2.6 DGV缓冲液,配制见A.4.2。 7.1.2.7 红细胞:采集公鹅血,用DGV缓冲液洗涤3次,重悬于DGV缓冲液中成7%悬液。存放于 4℃备用。临用前用硼酸盐缓冲液1∶24稀释。 7.1.2.8 待检血清:56℃灭活30min,取0.1mL待检血清加0.4mL25%白陶土溶液,混匀,置于 37℃作用30min,3000犵离心5min,取上清液备用。 7.1.3 操作方法 7.1.3.1 犎犃试验 将抗原用硼酸盐缓冲液作10倍稀释,4℃放置1h。在血凝板的第1孔~第12孔加入0.05mL硼 酸盐缓冲液;吸取0.05mL稀释后的抗原加入第1孔,混匀;从第一孔吸取0.05mL混匀后的抗原加入 第2孔,混匀后吸取0.05mL至第3孔,依次倍比稀释至第11孔。从第11孔吸取0.05mL弃之。每 孔加入0.05mL工作浓度的公鹅红细胞,室温孵育45min~60min后观察结果。以红细胞发生完全凝 集的最高稀释度作为病毒抗原的1个血凝素单位(1HA)。配制8单位抗原用于 HI试验。 7.1.3.2 犎犐试验 HI试验程序见表2。除第1孔外,血凝板的第2孔~第10孔,每孔加入0.025mL硼酸盐缓冲液。 第1孔和第2孔各加入0.025mL血清样品,混匀后从第2孔吸取0.025mL血清加入第3孔,依次倍 比稀释至第8孔,混匀后从第8孔吸取0.025mL,弃去。第9孔和第10孔不加血清,第9孔为血凝素 对照,第10孔为稀释液对照。除第10孔外,每孔加入8单位抗原0.025mL,4℃,过夜(或22℃~ 24℃,反应1h)。每孔加入0.05mL工作浓度的鹅红细胞悬液,37℃,30min后判定结果。每次试验 设立阳性和阴性血清对照。 表2 犎犐试验程序 单位为毫升 孔号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 稀释梯度 1/5 1/10 1/20 1/40 1/80 1/160 1/320 1/640 血凝素对照 稀释液对照 硼酸盐稀释液 血清   0.025     0.025 0.025 烍 烌 烎  0.025 烍 烌 烎0.025 0.025 烍 烌 烎0.025 0.025 烍 烌 烎0.025 0.025 烍 烌 烎0.025 0.025 烍 烌 烎0.025 0.025 烍 烌 烎 →0.025 0.025     0.025    0.05 8单位抗原 0.025 0.025 0.025 0.025 0.025 0.025 0.025 0.025 0.025 4℃,过夜(或22℃~24℃,反应1h) 红细胞 0.05 反应 37℃,30min 举例 — — — — — + +++ ++++ ++++ — 5 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 7.1.4 结果判定 阳性血清对照 HI滴度误差不超过一个滴度,阴性对照 HI滴度小于1/10,试验才为有效;待检血 清的HI滴度在1/10~1/20之间为可疑,大于1/40为阳性,小于1/10为阴性。可疑样品重复试验后仍 大于1∶10的判为阳性。 7.2 犐犵犕捕获犈犔犐犛犃 7.2.1 设备和器材 低温冰箱、超低温冰箱、温箱(37℃±2℃)、洗板机、酶标仪(405nm)、pH仪、天平(0.1g)、单道微 量移液器(1μL~20μL和20μL~200μL)、多道微量移液器(20μL~200μL)及配套枪头、96孔微量 反应板。 7.2.2 试剂和材料 7.2.2.1 ABTS底物溶液。 7.2.2.2 捕获抗体(羊抗马IgM抗体)。 7.2.2.3 辣根过氧化物酶标记α病毒属单抗(2A2C3)。 7.2.2.4 病毒抗原,由指定单位提供。 7.2.2.5 正常组织抗原,由指定单位提供。 7.2.2.6 阳性血清(血清OD405nm值不小于0.6)。 7.2.2.7 阴性血清(血清OD405nm值小于0.2)。 7.2.2.8 包被液、磷酸盐缓冲溶液、封闭液和PBST溶液,配制见A.5。 7.2.2.9 检测样品:马血清和(或)马脑脊液。 7.2.3 试验步骤 7.2.3.1 样品准备:用PBST溶液将阴阳性血清和被检血清1∶400倍稀释;脑脊液做1∶2倍稀释。 7.2.3.2 包被:用包被液稀释捕获抗体至工作浓度,每孔100μL加至96孔微量反应板,密封后置湿盒 中4℃静置14h。包被好的微量反应板4℃可保存45d。 注:每批捕获抗体应通过试验滴定以确定其最佳包被浓度。 7.2.3.3 封闭:取7.2.3.2包被好的微量反应板,弃去孔内液体,每孔加入300μLPBST溶液进行洗 涤,重复3次。每孔加入300μL封闭液,室温封闭60min~90min,弃去孔内液体,同前洗涤3次。 7.2.3.4 参照表3,进行试验布局。 表3 犈犔犐犛犃试验布局 孔号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 A 犅犾犪狀犽 犅犾犪狀犽 S1a S1a S2a S2a S3a S3a S4a S4a S5a S5a B 犅犾犪狀犽犪 犅犾犪狀犽犫 S1b S1b S2b S2b S3b S3b S4b S4b S5b S5b C S6a S6a S7a S7a S8a S8a S9a S9a S10a S10a S11a S11a D S6b S6b S7b S7b S8b S8b S9b S9b S10b S10b S11b S11b E S12a S12a S13a S13a S14a S14a S15a S15a S16a S16a S17a S17a F S12b S12b S13b S13b S14b S14b S15b S15b S16b S16b S17b S17b G S18a S18a S19a S19a S20a S20a S21a S21a 犘犆犪 犘犆犪 犖犆犪 犖犆犪 H S18b S18b S19b S19b S20b S20b S21b S21b 犘犆犫 犘犆犫 犖犆犫 犖犆犫   注:Blank为空白对照,PC为阳性对照,NC为阴性对照,S为检测样品。a为正常组织抗原组,b为病毒抗原组。 一块96孔微量反应板可检测21个未知样品。 6 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 7.2.3.5 加入稀释后的待检样品、阳性血清、阴性血清,空白对照孔用PBST代替,每孔50μL,37℃、 孵育90min~105min。 7.2.3.6 同前洗板3次。加入用PBST稀释的病毒抗原和正常组织抗原,A1和 A2孔加入50μL PBST,作无抗原对照。混匀,置湿盒中4℃孵育14h~28h。 7.2.3.7 同前洗板3次。每孔加入50μLPBST稀释的辣根过氧化物酶标记α病毒属单抗,37℃、湿 盒中孵育90min~105min。 7.2.3.8 同前洗板3次。每孔加入50μL底物溶液,混匀、封口后在室温避光孵育30min~35min。 7.2.3.9 用酶标仪测定OD405nm值。 7.2.4 结果判定 7.2.4.1 有效性判定 分别计算阳性血清对照病毒抗原孔和阴性血清对照病毒抗原孔的平均 OD405nm值,用阳性对照的 平均OD405nm值除以阴性对照的平均OD405nm计算P/N值。P/N值≥2.0试验方有效。 7.2.4.2 阳性临界值的计算 阳性临界值等于两个阴性血清对照病毒抗原孔的平均OD405nm值再乘以2。 7.2.4.3 结果判定 被检样品的OD405nm值大于或等于阳性临界值,判定为阳性;被检样品的OD405nm值小于阳性临界 值,判定为阴性;若同一样品病毒抗原孔产生的OD405nm值大于阳性临界OD405nm值,但正常抗原孔产生 的OD405nm值大于病毒抗原孔产生的OD405nm,试验为非特异性反应,需重新试验。 7.3 蚀斑减数中和试验(犘犚犖犜) 7.3.1 设备和器材 低温冰箱、超低温冰箱、水浴锅、二氧化碳培养箱、倒置式光学显微镜、生物安全柜(ClassⅡ以上)、 微量移液器(50μL~200μL)(及配套枪头)。 7.3.2 试剂和材料 7.3.2.1 试剂 EMEM培养基、10×Earle’sBBS缓冲液,胎牛血清(FBS)(无BVDV、VEE、EEE和 WEE抗体,并 经辐照处理)、制霉菌素B、庆大霉素、碳酸氢钠溶液、中性红和铺板溶液(溶液Ⅰ和Ⅱ),配制见A.6。 7.3.2.2 材料 Vero细胞、病毒储液(EEE,WEE,VEE)、阳性血清(分别抗VEE,EEE和 WEE)、阴性血清、待检 样品(血清和/或脑脊液)、玻璃移液管、离心管、细胞培养瓶。 7.3.3 操作步骤 7.3.3.1 病毒抗原的工作浓度确定 7.3.3.1.1 病毒接种 用EMEM无血清培养基将病毒储液从10-1到10-8梯度稀释后,每个梯度取0.2mL液体和 7 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 0.2mLEMEM(含20%FBS)混合,37℃孵育75min~80min。每个稀释度各接种两瓶 Vero细胞, 0.1mL/瓶,37℃孵育1h~2h。 7.3.3.1.2 铺板计数 将铺板溶液Ⅱ置于56℃水浴30min后转移到47℃水浴,同时将铺板溶液Ⅰ置于47℃水浴。铺 板前15min配制铺板溶液:将溶液Ⅰ和溶液Ⅱ等体积混合,置于47℃水浴备用。弃去感作病毒液,每 瓶加铺板溶液6mL,水平放置15min,待琼脂自然凝固后,37℃倒置培养2d~3d。逐日观察每个稀 释度的蚀斑形成情况。取最接近100pfu(蚀斑形成单位)的稀释度,按式(1)折算为100pfu/0.1mL的 稀释度(X)。用该稀释度作为病毒储液的工作浓度。 (pfu/0.1mL)×(稀释度)=(100/0.1mL)×(X) ……………………(1) 7.3.3.2 细胞准备 将Vero细胞传于25cm2 细胞瓶中,待细胞长满备用。若同时检测EEEV、WEEV和VEEV,每次 试验至少需18瓶细胞作试验对照:3瓶用作细胞对照,6瓶用作感染工作浓度病毒对照(每种病毒 2瓶),3瓶用作感染10-1工作浓度病毒对照(每种病毒1瓶),6瓶用作EEE、WEE、VEE阳性血清对照 (每种病毒做两瓶:一瓶加1∶10稀释血清,一瓶加1∶100稀释血清)。每份样品,若同时做VEE、EEE 和 WEE鉴别,需用6瓶细胞:每种病毒用2瓶,一瓶加1∶10稀释血清,一瓶加1∶100血清。 7.3.3.3 血清样品的稀释 7.3.3.3.1 无菌吸取0.2mL待检样品和阳性血清加入0.8mLEMEM(含1×抗生素)中做1∶5稀 释后,取0.1mL稀释液加到0.9mL的EMEM(含1×抗生素)中,使得血清稀释度为1∶50。样品和 对照血清,56℃灭活25min~35min。取1.5mL、离心管若干,如下分装: ———待测样品和阳性血清:每种病毒,各取1∶5稀释和1∶50稀释的血清0.2mL分别加入不同 的离心管中; ———病毒对照:每种病毒,取3支管,每支加入0.2mLEMEM 培养基(20%FBS)。2支做工作浓 度病毒对照,1支做10-1工作浓度病毒对照; ———细胞对照:只含0.2mLEMEM培养基(10%FBS)。 将配制好的样品和对照置冰盒中,备用。 7.3.3.4 中和反应 7.3.3.4.1 按7.3.3.1.2准备工作浓度病毒液(100pfu/0.1mL)。取0.2mL工作浓度病毒液加至 1.8mLEMEM中,制备成10-1工作浓度病毒液(10pfu/0.1mL)。 7.3.3.4.2 取0.2mL工作浓度病毒液加入到7.3.3.3.1分装的待检血清和阳性血清中,稀释血清至 1∶10和1∶100;取0.2mL稀释好的工作浓度病毒液和10-1工作浓度病毒液加入到7.3.3.3.1的病 毒对照中;细胞对照不添加病毒液。分别混匀,37℃孵育75min~80min后转移到冰盒中备用。 7.3.3.5 接种 弃去细胞培养液,取7.3.3.4.2反应后的混合物0.1mL加至7.3.3.2准备的细胞单层,使混合液 均匀布满整个细胞表面。细胞对照加0.1mLEMEM(10%FBS)。37℃孵育1h~2h,每隔20min摇 动一次细胞瓶。 7.3.3.6 铺板 按照7.3.3.1.2的方法进行铺板。待琼脂自然凝固,37℃、5%二氧化碳倒置培养2d~3d,观察结果。 8 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 7.3.4 结果判定 7.3.4.1 10-1工作浓度病毒对照相对于工作浓度病毒对照蚀斑减少90%±5%;阳性血清对照在 1∶10和1∶100两个稀释度均无蚀斑出现,或蚀斑数在10个以内;细胞对照组无任何病毒蚀斑,细胞生 长良好,则试验成立。 7.3.4.2 若样品出现较多蚀斑,数量相当于工作浓度病毒对照蚀斑数的20%(及以上),判定为阴性; 若样品蚀斑数相当于工作浓度病毒对照蚀斑数的10%~20%,判定为可疑;若无可见病毒蚀斑,或蚀斑 数量相当于工作浓度病毒对照蚀斑数的10%(及以内),判定为阳性。 8 结果报告 8.1 病原分离鉴定 病原分离试验阳性,且免疫荧光分型试验中只检测出一种病毒,或其中一种委内瑞拉马脑脊髓炎病 毒的反应性大于其他委内瑞拉马脑脊髓炎病毒4倍以上,可判定该亚型的委内瑞拉马脑脊髓炎阳性。 否则,报告为委内瑞拉马脑脊髓炎阴性。 8.2 血清学检测 在血凝抑制试验和病毒蚀斑减数中和试验中,任一试验结果为阳性,判定为委内瑞拉马脑脊髓炎抗 体阳性,否则报告为委内瑞拉马脑脊髓炎抗体阴性;若同一动物的脑脊液和血清的IgM捕获ELISA检 测结果均为阳性,报告为委内瑞拉马脑脊髓炎阳性,否则,需进一步试验。 9 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 附 录 犃 (规范性附录) 溶 液 配 制 犃.1 采样用试剂 犃.1.1 犘犅犛/犅犛犃溶液配制 磷酸氢钠          1.19g 磷酸二氢钠 0.22g 氯化钠 8.5g 牛血清白蛋白(BSA) 7.5g 混合前三种药品,加双蒸水900mL,用氢氧化钠调节pH至7.8,定容到1L。加入牛血清白蛋白, 溶解后过滤除菌。4℃保存。 犃.1.2 抗生素溶液 青霉素G钾(1586U/mg)     15.77g 硫酸链霉素 50g 加水至1L,溶解后过滤除菌。-20℃保存。 犃.1.3 样品缓冲液 在采集组织样品前,取抗生素溶液0.2mL加入100mLPBS/BSA溶液。4℃保存。 犃.1.4 柠檬酸钠抗凝剂 柠檬酸钠        30g 柠檬酸 10g 葡萄糖 25g 加水1L。高压灭菌,室温保存。 犃.2 病原分离用试剂 犃.2.1 细胞生长液和维持液 按照 MEM培养基说明书配制,通过添加氢氧化钠或者盐酸溶液调节pH值至6.9和7.2两个梯 度,前者用于RK13细胞培养,后者用于Vero细胞培养;并添加胎牛血清制备8%和2%两种不同血清 浓度的培养基,前者作为细胞生长液,后者作为细胞维持液。 犃.2.2 犃犜犞缓冲液 氯化钠       8.0g 氯化钾 0.4g 右旋葡萄糖 1.0g 碳酸氢钠 0.58g 01 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 胰蛋白酶 0.5g 乙二胺四乙酸二钠 0.2g 5%酚红 0.4mL 加双蒸水到800mL,用氢氧化钠溶液调节pH到7.2,定容至1L。过滤除菌。-20℃保存。 犃.3 犐犉犃试验用试剂 犃.3.1 犘犅犛溶液 氯化钠       8.50g 磷酸氢钠 1.33g 磷酸二氢钠 0.22g 加水至900mL,用氢氧化钠溶液调节pH 至7.2,定容至1L。121℃,15min高压灭菌。室温 保存。 犃.3.2 封固溶液 甘油/PBS溶液(1∶1,体积比),121℃,15min高压灭菌后存放于室温。 犃.4 血凝抑制试验用试剂 犃.4.1 硼酸盐缓冲液(狆犎9.0,含0.4%犅犛犃) 1.5mol/L氯化钠    160mL 0.5mol/L硼酸 200mL 1.0mol/L氢氧化钠 47mL 加水至1800mL,用1mol/L氢氧化钠溶液或0.5mol/L硼酸调节pH到9.0,定容至2L。每升 硼酸盐缓冲液加入4g牛血清白蛋白。 犃.4.2 犇犌犞缓冲液 犃.4.2.1 犃液 明胶            0.600g 二乙基巴比妥酸(巴比妥) 0.580g 犃.4.2.2 犅液 巴比妥钠       0.380g 无水氯化钙 0.020g 氯化钠 8.500g 葡萄糖 10.000g 硫柳汞 0.100g 七水硫酸镁 0.120g 犃.4.2.3 配制 分别用250mL和750mL水溶解配制A液和B液。混合A液和B液,121℃,15min高压灭菌后 于室温保存。 11 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 犃.5 犈犔犐犛犃试验用试剂 犃.5.1 包被液 无水碳酸钠      0.386g 无水碳酸氢钠 0.76g 蒸馏水 200mL 用5mol/L盐酸将pH调至9.6±0.05,4℃保存,1周内使用。 犃.5.2 磷酸缓冲溶液(犘犅犛) 氯化钠        8.5g 磷酸二氢钠 0.22g 磷酸氢二钠 1.19g 加水900mL,用盐酸将pH调至7.2±0.1,定容至1L,121℃,15min高压灭菌后室温保存。 犃.5.3 犘犅犛犜溶液 0.01mol/LPBS    1.0L 吐温20 0.5mL 犃.5.4 封闭液 脱脂奶粉       5.0g PBS:吐温2 100.0mL 用玻棒搅拌使其充分溶解,置于4℃储存,1周内使用。 犃.6 蚀斑减数中和试验用试剂 犃.6.1 犈犕犈犕培养基 MEMwithEarle’s盐   9.61g EdamintypeS 5.0g(单独溶解于100mL水中) 丙酮酸钠 10.0mL L谷氨酰胺 12.0mL 碳酸氢钠 1.5g 将EMEM、丙酮酸钠、L谷氨酰胺及碳酸氢钠混合后,加入溶解的EdamintypeS,加双蒸水至1L。 用2mol/L盐酸调节pH至7.0~7.2,过滤除菌。临用前按要求加入胎牛血清。 注:EMEM培养基市售可用。 犃.6.2 0.1%中性红 中性红(65%dyeinpowder)   0.151g 加双蒸水1L,115℃,10min,高压灭菌(或过滤除菌)。4℃避光保存。 注:0.1%中性红市售可用 犃.6.3 7.5%碳酸氢钠溶液 准确称取75g碳酸氢钠,加入925mL双蒸水,定容至1L。 21 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 犃.6.4 铺板溶液配制表 见表A.1。 表犃.1 铺板溶液配制表 液体单位为毫升,固体单位为克 终体积/含量/(mL/g) 100 150 200 250 300 400 500 600 700 800 1000 溶 液 Ⅰ Earle’sBBS缓冲液 (10×)a 10 15 20 25 30 40 50 60 70 80 100 灭菌双蒸水 34 51 68 85 102 138 170 204 238 272 340 胎牛血清 2 3 4 5 6 8 10 12 14 16 20 庆大霉素 (50mg/mL) 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 1 制霉菌素B (1mg/mL) 0.05 0.07 0.1 0.12 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4 0.5 0.1%中性红 (注意避光) 1 1.5 2 2.5 3 4 5 6 7 8 10 碳酸氢钠(7.5%) (最后加) 3 4.5 6 7.5 9 12 15 18 21 24 30 制备方法 配制完毕后,过滤除菌。 溶 液 Ⅱ 低熔点琼脂/g 1 1.5 2 2.5 3 4 5 6 7 8 10 灭菌双蒸水 50 75 100 125 150 200 250 300 350 400 500 制备方法 121℃,10min高压灭菌。   a 市售可用。 31 犛犖/犜2833—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 书书书 1102— 3382 犜/ 犖犛 中华人民共和国出入境检验检疫 行 业 标 准 委内瑞拉马脑脊髓炎检疫技术规范 SN/T2833—2011  中 国 标 准 出 版 社 出 版 北京复兴门外三里河北街16号 邮政编码:100045 网址 www.spc.net.cn 电话:68523946 68517548 中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷  开本 880×1230 1/16 印张 1.25 字数 27 千字 2011年6月第一版 2011年6月第一次印刷 印数1—1600  书号:155066·222012 定价 21.00 元 版权所有 · 禁止翻制、电子发售
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