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产气气杆菌产普鲁兰酶发酵培养基的优化

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产气气杆菌产普鲁兰酶发酵培养基的优化 第 24 卷 第 3 期 2009 年 6 月 天津科技大学学报 Journal of Tianjin University of Science & Technology Vol.24 No. 3 Jun. 2009 收稿日期:2008-09-25;修回日期:2008-12-11 基金项目:国家科技基础条件平台资助项目(2005DKA21204-10) 作者简介:巩 培(1982—),男,内蒙古人,硕士研究生;通信作者:戚 薇,教授,Qiwei@tust.edu.cn. ...

产气气杆菌产普鲁兰酶发酵培养基的优化
第 24 卷 第 3 期 2009 年 6 月 天津科技大学学报 Journal of Tianjin University of Science & Technology Vol.24 No. 3 Jun. 2009 收稿日期:2008-09-25;修回日期:2008-12-11 基金项目:国家科技基础条件平台资助项目(2005DKA21204-10) 作者简介:巩 培(1982—),男,内蒙古人,硕士研究生;通信作者:戚 薇,教授,Qiwei@tust.edu.cn. 产气气杆菌产普鲁兰酶发酵培养基的优化 巩 培,戚 薇,杜连祥,刘 伊 (工业微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津 300457) 摘 要:对一株产气气杆菌产普鲁兰酶的发酵培养基进行了优化,确定了该菌株的最适发酵培养基配方为(g/L):玉米 淀粉 15,豆饼粉 10,CH3COONH4 8,K2HPO4·3H2O 0.5,MgSO4·7H2O 0.5,KCl 0.5,FeSO4·7H2O 0.05.采用该培养基在 5.L 发酵罐水平发酵 55.h,普鲁兰酶活力达到 54.64.U/mL.研究了不同铵盐形式对该菌株产普鲁兰酶的影响,结果发 现:以 CH3COONH4 为无机氮源,该菌株产普鲁兰酶活力高,且该酶绝大部分能分泌至胞外.而以 NH4Cl,NH4NO3 及 (NH4)2SO4 为无机氮源,该菌产普鲁兰酶活力较低,且为胞内酶. 关键词:普鲁兰酶;产气气杆菌;铵盐形式 中图分类号:Q933 文献标志码:A 文章编号:1672-6510(2009)03-0010-03 Optimization of the Fermentation Medium for Producing Pullulanase by Aerobacter aerogenes GONG Pei,QI Wei,DU Lian-xiang,LIU Yi (Key Laboratory of Industrial Microbiology,Ministry of Education,College of Biotechnology, Tianjin University of Science & Technology,Tianjin 300457,China) Abstract:The fermentation medium for producing pullulanase by Aerobacter aerogenes was studied. The fermenta- tion medium consists of(g/L):15 corn starch,10 bean powder,8 CH3COONH4,0.5 K2HPO4·3H2O,0.5 MgSO4·7H2O, 0.5 KCl,0.05 FeSO4·7H2O. The experiment was also carried out in a 5 L fermentor. The effects of different kinds of ammonium salt on activity of pullulanase were studied. The results show that the pullulanase is secreted into the growth medium and perform the highest activity when CH3COONH4 is used as nitrogen. However,pullulanase is not secreted into the growth medium and the strain has low-yield production in the presence of NH4Cl,NH4NO3 and(NH4)2SO4. Keywords:pullulanase;Aerobacter aerogenes;ammonium salt 普鲁兰酶(pullulanase,EC 3,2,1,41),又称普鲁 兰-6-葡聚糖水解酶或α-糊精-6-葡聚糖水解酶,属于 淀粉水解酶,是一种专一性地水解支链淀粉分支点中 的α-1,6-糖苷键,剪下整个侧枝而形成直链淀粉的 脱支酶.目前普鲁兰酶主要应用于以淀粉为原料的 食品等工业部门,特别在淀粉糖和酿造行业中应用广 泛.在淀粉水解过程中,普鲁兰酶与α-淀粉酶、糖化 酶配合使用可将淀粉彻底降解为葡萄糖.在西方国 家医用葡萄糖的生产中几乎都使用普鲁兰酶.此外, 普鲁兰酶在高麦芽糖浆,干啤酒生产中均有应用[1-2]. 1998 年,肖敏等人[3]从白酒发酵现场中分离出一 株产普鲁兰酶的 K1 23 菌株,最高酶活力为 4.56, U/mL.1999 年, 翀金 等人[4]从土壤中分离出一株产普 鲁兰酶的芽孢杆菌,通过优化发酵培养基及培养条 件,酶活力可达 4.5,U/mL,在 2,L 的发酵罐中酶活力 可稳定在 3.3,U/mL.2001 年,唐宝英等人[5]从土壤中 筛选出一株产普鲁兰酶的芽孢杆菌,经过紫外及 EMS 多次诱变,最高酶活力可达 8.8 U/mL.综合诸 多有关普鲁兰酶的报道,各项研究中的酶活力均处于 较低水平. 2009 年 6 月 巩 培,等:产气气杆菌产普鲁兰酶发酵培养基的优化 ·11· 我 国 工 业 上 所 用 的 普 鲁 兰 酶 均 是 从 丹 麦 的 NOVO 和美国的杰能科公司进口,世界上也只有这两 个公司具备了普鲁兰酶的工业化生产能力.基于此 现状,本文对天津科技大学工业微生物菌种保藏室保 藏的一株具有产较高普鲁兰酶活力的产气气杆菌进 行研究,优化其发酵培养基,以提高该菌株产酶活力, 为尽快在我国实现该酶的工业化生产奠定基础. 1 材料与方法 1.1 菌株与培养基 产气气杆菌(Aerobacter aerogenesTCCC11061), 由天津科技大学工业微生物菌种保藏室保藏. 摇瓶种子培养基为肉汤培养基,斜面培养基为肉 汤培养基中加入 2%的琼脂. 初始发酵培养基(g/L):可溶性淀粉 15,蛋白胨 5,CH3COONH4 8,K2HPO4·3H2O 0.5,MgSO4·7H2O 0.5, KCl 0.5,FeSO4·7H2O 0.05,pH 7.2~7.4. 1.2 主要原料 甘薯淀粉,舒城大海淀粉有限公司;其余淀粉均 为市售;溶菌酶,博大泰克生物公司;其余试剂均为国 产化学纯及生化试剂. 1.3 菌种的培养及发酵 将新鲜斜面上的菌种转接于装有 30 mL 种子培 养基的 250,mL 三角瓶中,30,℃、200,r/min 摇床振荡 培养 12,h,然后以 3%的接种量将种子培养液转接于 装有 100,mL 发酵培养基的 500,mL 三角瓶中,30,℃、 180,r/min 摇床振荡培养 75,h. 5,L 发酵罐发酵条件:接种量 3%,装料系数 0.7, 温度 30,℃,转速 200~600,r/min,溶氧维持在 10%~ 15%,连续培养 55,h. 1.4 粗酶液的制备及酶活力的测定 胞外酶:收集发酵液,8,000,r/min 离心 20,min,上 清液即为粗酶液. 胞内酶:离心后的细胞,10,mg/mL 溶菌酶 37,℃ 处理 1,h,离心上清液即为粗酶液. 采用 DNS 法测定酶活力,按文献[6]所述方法并 略作修改:分别吸取 0.5%普鲁兰糖溶液 1,mL、醋酸缓 冲液(pH 5.8)1,mL、酶液(适当稀释)1,mL,55,℃保温 30,min,迅速冷却,取 1,mL 反应液加入 1.5,mL DNS 试剂,沸水浴 5,min 显色,冰水速冷,定容至 10,mL, 540,nm 比色,灭活酶液作对照. 酶活力单位定义:在 pH 5.8、温度 55,℃下,每分 钟从普鲁兰底物释放相当于 1,μmol 葡萄糖的还原量 所需的酶量定义为一个活力单位. 1.5 菌体核酸量、总糖、DE 值的测定 菌体量用菌体核酸量来 关于同志近三年现实表现材料材料类招标技术评分表图表与交易pdf视力表打印pdf用图表说话 pdf 示[7].总糖的测定参照 文献[8].不同 DE 淀粉的制备与测定参考文献[9]. 2 结果与讨论 2.1 培养基组成对产酶的影响 2.1.1 不同种类淀粉对产酶的影响 (1)碳源的种类 在发酵培养基中分别加入 15,g/L 的不同种类的 淀粉,测定其发酵液中普鲁兰酶的活力,结果如表 1 所示.玉米淀粉与可溶性淀粉最适合该菌株产酶,为 了节约成本,选用玉米淀粉为碳源. 表 1 不同种类淀粉对产酶的影响 Tab.1 Effect of different starch on pullulanase production U/mL 可溶性淀粉 甘薯淀粉 土豆淀粉 玉米淀粉 25.24 5.80 7.62 24.86 (2)玉米淀粉用量对产酶的影响 改变玉米淀粉的用量,测定其对产酶的影响,结 果如表 2 所示.结果表明,玉米淀粉用量 10,g/L 时酶 活最高,20,g/L 以上酶活力将会降低. 表 2 玉米淀粉浓度对产酶的影响 Tab.2 Effect of corn starch concentration on pullu- lanase production 质量浓度/(g·L-1) 5 10 15 20 25 酶活力/(U·mL-1) 15.42 26.14 24.86 16.86 14.12 (3)不同 DE 的液化玉米淀粉对产酶的影响 采用不同 DE 的液化玉米淀粉测定对产酶的影 响,结果如表 3 所示.由表 3 可见,DE 为 6.7%时最适 合该菌株产酶. 表 3 不同 DE 的液化玉米淀粉对产酶的影响 Tab.3 Effect of different liquefacient corn starch on pullulanase production DE /% 2.4 4.5 6.7 8.6 9.8 11.2 酶活力/ (U·mL-1) 26.86 28.42 34.64 32.12 30.54 25.20 2.1.2 不同有机氮源对产酶的影响 (1)氮源的确定 有机碳源为 10,g/L 玉米淀粉(DE 为 6.7%),以 8,g/L 的醋酸铵为无机氮源,采用不同的有机氮源,测 定其对产酶的影响,结果见表 4.由此可知,豆饼粉 是最适合该菌株产酶的有机氮源. ·12· 天津科技大学学报 第 24 卷 第 3 期 表 4 不同有机氮源对产酶的影响 Tab.4 Effect of different organic nitrogen source on pullulanase production U/mL 豆饼粉 蛋白胨 玉米浆 酵母粉 38.34 24.86 34.65 25.67 注:豆饼粉添加前先经预处理,方法为:豆饼粉加 10 倍水,于 121 ℃ .蒸煮 30 min,冷却后调 pH 7.0,添加中性蛋白酶量 180~200 U/g, .酶解 1 h 备用.豆饼粉添加量以干基计算. (2)豆饼粉用量对产酶的影响 有机碳源选用 10,g/L 的玉米淀粉(DE 为 6.7%), 改变豆饼粉的用量,测定结果见表 5,豆饼粉用量为 10,g/L 时最适合该菌株产酶. 表 5 豆饼粉初始浓度对产酶的影响 Tab.5 Effect of beanpowder concentration on pullulanase production 质量浓度/(g·L-1) 2.5 5.0 7.5 10.0 15.0 酶活力/(U·mL-1) 20.36 28.42 32.64 40.04 28.73 2.1.3 铵盐形式对产酶的影响 (1)铵盐的确定 培养基中分别添加 8,g/L 醋酸铵、硫酸铵、硝酸 铵及氯化铵,以不加铵盐作为对照,测定其对产酶的 影响,结果见表 6.培养基中加入醋酸铵时,该菌所产 的普鲁兰酶活力最高,而且该酶大部分能分泌至发酵 液中,而使用硫酸铵、硝酸铵和氯化铵时,该菌普鲁兰 酶活力较低,且该酶累积于胞内. 表 6 不同铵盐对产酶的影响 Tab.6 Effect of different ammonium salt on pullu- lanase production 酶活力/(U·mL-1) 铵盐形式 胞内 胞外 总酶 醋酸铵 15.00 41.20 56.20 硫酸铵 30.22 0 30.22 硝酸铵 15.46 0 15.46 氯化铵 10.34 0 10.34 对照 0 0 0 (2)醋酸铵用量对产酶的影响 有机碳源为 10,g/L 的玉米淀粉(DE 为 6.7%),有 机氮源为 10,g/L 的豆饼粉,改变醋酸铵的用量,测定 其对产酶的影响,结果如表 7 所示,醋酸铵用量为 8,g/L 时最适合该菌株产酶. 表 7 醋酸铵初始浓度对产酶的影响 Tab.7 Effect of acetate ammonium concentration on pullulanase production 质量浓度/(g·L-1) 4 6 8 10 12 酶活力/(U·mL-1) 24.16 32.14 41.28 40.12 28.42 2.2 最佳发酵培养基的确定 在单因素实验基础上可知,玉米淀粉、豆饼粉和 醋酸铵用量对产酶有较大影响.为考察各因素之间 的相互作用,采用 L9(34)进行正交实验设计,正交实 验结果见表 8.由表 8 可知,玉米淀粉和醋酸铵的影 响较显著.三个因素的影响程度依次为:醋酸铵>玉 米淀粉>豆饼粉.利用均值可以确定各水平的最适 用量,即玉米淀粉 15,g/L,豆饼粉 10,g/L,醋酸铵 8,g/L.其产酶活力最高,达 41.68,U/mL. 表 8 培养基正交实验结果 Tab.8 Results of L9(34)orthogonal experiments 序号 玉米淀粉/ (g·L-1) 豆饼粉/ (g·L-1) 醋酸铵/ (g·L-1) 酶活力/ (U·mL-1) 1 10 6 4 20.32 2 10 10 8 35.64 3 10 14 12 23.46 4 15 6 8 38.22 5 15 10 12 32.72 6 15 14 4 22.28 7 20 6 12 29.68 8 20 10 4 22.54 9 20 14 8 34.82 均值 1 26.473 29.407 21.713 均值 2 31.073 30.300 36.227 均值 3 29.013 26.853 28.620 极差 R 4.600 3.447 14.514 偏差平方和 31.855 19.197 316.200 自由度 2 2 2 F 比 11.588 6.983 115.024 注: F 临界值 F0.10(2,2)=9.000. 2.3 摇瓶发酵过程曲线 从图 1 可以看出,采用优化后的发酵培养基,30 ℃、180,r/min 培养 75,h,最 高普 鲁兰 酶活 力可达 42.82,U/mL.菌体从对数期末开始产酶,在稳定期达 到产酶高峰,在稳定期后期酶活力开始下降,所以控 制发酵终点很重要. 图 1 摇瓶发酵过程曲线 Fig.1 Time courses of fermentation process in shake flask (下转第 42 页) ·42· 天津科技大学学报 第 24 卷 第 3 期 3 结 论 (1)通过对 6 种树脂进行筛选,发现 X-5 树脂对 红花红色素的吸附和解吸效果最好. (2)X-5 树脂对红花红色素的吸附在室温、pH 7.0~9.0 的条件下效果较好;其解吸采用 60%乙醇溶 液,pH 为 7.0~9.0 的条件下洗脱效果较好,可得到较 高色价的色素. 参考文献: [1] 吴德意. 红花红色素的提取工艺及产品质量控制[J]. 化工进展,2003,(11)1:26-28. [2] 卿德刚,倪慧,冯玉霞,等. 红花红色素的提取及其性质 研究[J]. 现代中药研究与实践,2007,21(5):53-54. [3] 傅建祥,张锐,候美娟. 食用天然红花红、黄色素的研制 [J]. 甘肃科学学报,1999(4):20-21. [4] 赵钢,王安虎. 红花的资源及药用价值[J]. 中国野生 植物资源,2004,23(3):24-25. [5] 王若菁,杨滨. 红花的化学成分及质量标准研究进展 [J]. 中国实验方剂学杂志,2007,13(5):65-69. [6] 高卫华,李文君. 草红花中红色素的提取和应用[J]. 内蒙古草原,1998(4):50-51. [7] 刘红,钱宗耀,李炳奇,等. 红花红色素的超声提取研究 [J]. 现代食品科技,2007,23(7):32-33. (上接第 12 页) 2.4 5 L 发酵罐发酵过程曲线 在摇瓶基础上进行了 5,L 发酵罐的放大实验,并 对发酵过程中的菌体核酸量、pH、残糖量和普鲁兰酶 活力进行测定,结果如图 2 所示.5,L 发酵罐发酵过程 曲线与摇瓶发酵曲线基本一致,由于发酵罐可以直接 控制溶氧等参数,菌体比在摇瓶中提前进入稳定期. 发酵55,h,普鲁兰酶活力最高可达到 54.64,U/mL. 图 2 5 L发酵罐发酵过程曲线 Fig.2 Time courses of fermentation process in 5 L fermentor 3 结 语 对产气气杆菌产普鲁兰酶的发酵培养基进行优 化后,确定了该菌株的最适发酵培养基配方为(g/L): 玉米淀粉 15,豆饼粉 10,CH3COONH4 8,K2HPO4· 3H2O 0.5,MgSO4·7H2O 0.5,KCl 0.5,FeSO4·7H2O 0.05.在摇瓶和 5,L 发酵罐水平研究了其菌体生长曲 线和产酶曲线,该菌在对数期末开始产酶,5,L 发酵罐 条件下发酵 55,h,酶活力可达到 54.64,U/mL. 参考文献: [1] 夏子芳,王正祥. Thermotoga maritima 普鲁兰酶的基 因克隆与酶学性质研究[J]. 食品与发酵工业,2007, 33(4):19-22. [2] 周念波,孙杰,王晶,等. 普鲁兰酶在食品工业中的应用 [J]. 食品工程,2008(2):18-20. [3] 肖敏,赵祥颖,刘复今. K123 菌株普鲁兰酶的合成及其 酶性质的研究[J]. 山东大学学报,1998,33(1):87-94. [4] 金翀,顾国贤,陆健. 培养基及培养条件对普鲁兰酶的 影响[J]. 无锡轻工大学学报,1999,18(2):33-38. [5] 唐宝英,朱晓慧,刘佳. 耐酸耐热普鲁兰酶菌株的筛选 及发酵条件的研究[J]. 微生物学通报,2001,28(1): 39-43. [6] Madi E,Antranikian K,Ohmiya K,et al. Thermostable amylolytic enzymes from a new Clostridium isohte[J]. Applied and Enviromental Microbiology,1987,53(7): 1661-1667. 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